Помочь сайту

Если Вам помогла информация, которую Вы здесь обнаружили - помогите дополнить сайт другими уникальными материалами. Поддержите сайт любой суммой.

Гагарин В.В. Ветеринарно-санитарная экспертиза мяса страусов.

Гагарин В.В. Ветеринарно-санитарная экспертиза мяса страусов. Диссертация на соискание учёной степени кандидата ветеринарных наук. ВНИИВСГЭ РАСХН, Москва, 2005. 122 с.

 

 

Небольшое предисловие... Тематика данной диссертации не вполне соответствует критериям Сайта, однако интересующиеся разведением страусов смогут найти в ней для себя интересную информацию. К огромному моему сожалению, рукопись перед публикацией и защитой пришлось существенно сократить. Дополнительный повод для размещения - это свободная торговля моей диссертацией на некоторых сайтах. Так что - читайте информацию о страусах бесплатно! Ну, а если кому-то понадобиться консультация по вопросам страусоводства - смело обращайтесь!

 

РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ НАУК

 

Государственное научное учреждение

Всероссийский научно-исследовательский институт

ветеринарной санитарии гигиены и экологии

 

На правах рукописи

 

Гагарин Вячеслав Владимирович

 

Ветеринарно-санитарная экспертиза мяса страусов.

 

16.00.06 - Ветеринарная санитария, экология, зоогигиена

и ветеринарно-санитарная экспертиза.

 

Диссертация

на соискание учёной степени

кандидата ветеринарных наук

Научный руководитель

заслуженный деятель науки РФ,

доктор ветеринарных наук,

профессор М.П. Бутко.

 

МОСКВА - 2005

 

CОДЕРЖАНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

Часть I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Глава 1. Страусоводство и его промышленное значение

1.1 История хозяйственного использования страусов

1.2 Кормление страусов

1.3 Содержание страусов

Глава 2. Сведения о систематике, биологии, анатомии и физиологии страусов

Глава 3. Продукция страусоводства и её пищевая ценность

Глава 4. Болезни, отмечаемые у страусов

4.1 Основные заразные болезни

4.2 Основные незаразные болезни

Часть II. CОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

Глава 1. Материалы и методы исследований

1.1 Предубойный ветеринарный осмотр и послеубойная экспертиза мяса страусов

1.2 Определение свежести мяса страусов

1.3 Исследование санитарно-микробиологических показателей мяса страусов

1.4 Определение общего химического состава мяса страусов, содержания холестерина, витаминов

и минеральных веществ

1.5 Микроструктурные исследования мышечной ткани страуса

1.6 Определение аминокислотного и жирнокислотного состава мяса страусов

1.7 Определение относительной биологической ценности (ОБЦ) мяса страусов

РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Глава 2. Ветеринарные рекомендации по строительству и эксплуатации ферм для содержания страусов

и ветеринарные требования к убойным пунктам

2.1 Ветеринарно-санитарные рекомендации по строительству и эксплуатации ферм для содержания страусов

2.2 Ветеринарные требования к убойным пунктам и площадкам

Глава 3. Предубойный ветеринарный осмотр и послеубойная ветеринарно-санитарная экспертиза туш

и органов страусов

3.1 Проведение предубойного ветеринарного осмотра страусов

3.2 Ветеринарно-санитарный контроль технологии убоя и переработки страусов

3.3 Послеубойная ветеринарно-санитарная экспертиза туш и органов страусов

Глава 4. Определение органолептических и физико-химических показателей мяса страусов

4.1 Органолептические показатели свежести мяса

4.2 Физико-химические показатели свежести мяса

Глава 5.Санитарно-микробиологический контроль мяса страусов после убоя и в процессе хранения

5.1 Исследования по определению КМАФАнМ

5.2 Исследования по выделению БГКП

5.3 Исследования по выделению сальмонелл

Глава 6. Изучение качественных показателей мяса страусов

6.1 Общий химический состав мяса

6.2 Аминокислотный состав мяса

6.3 Содержание холестерина в мясе

6.4 Жирнокислотный состав липидов мышечной ткани

6.5 Содержание некоторых витаминов в мясе

6.6 Содержание минеральных веществ

6.7 Микроструктурная композиция мышечной ткани страусов

6.8 Относительная биологическая ценность мяса страусов

ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ

ВЫВОДЫ

ПРЕДЛОЖЕНИЯ ДЛЯ ПРАКТИКИ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

ПРИЛОЖЕНИЕ

 

ВВЕДЕНИЕ

 

Продуктивное страусоводство России - отрасль сельского хозяйства ещё не отметившая своего десятилетия. Зародившаяся благодаря отдельным энтузиастам, она в настоящее время продолжает активно развиваться на волне всеобщего интереса к нетрадиционным видам продуктов для здорового питания. Страусофермы, возникающие на просторах нашей страны в большинстве своём управляются и обслуживаются людьми не являющимися специалистами в области страусоводства.

Среди традиционных видов мяса, присутствующих на российском рынке, таких как: свинина, говядина, мясо кур и некоторые другие, в последнее время появляются и такие экзотические, как мясо страуса. В связи с этим получают развитие фермы по разведению страусов как продуктивной птицы. Их появление вызвано в первую очередь стремлением некоторой части населения приобрести необычный по своим характеристикам продукт питания. Мясо страуса приобрело популярность за границей в конце прошлого века на волне стремления к здоровому питанию и образу жизни [59, 117]. Не в последнюю очередь этому послужил и рост недоверия к традиционным видам мяса, производимым за рубежом на индустриальной основе с использованием многочисленных химических добавок, а также с возникновением в последнее время некоторых опасных заболеваний домашних животных, в частности - губчатой энцефалопатии крупного рогатого скота и др.

От страуса получают мясо по вкусу и текстуре напоминающее телятину или говядину (в зависимости от возраста). Цвет мяса в туше страуса равномерно красный. Незначительное изменение цвета в сторону более тёмного оттенка красного цвета, характерно для глубоколежащих мышц. Оно отличается высоким содержанием белков и низкой калорийностью, при содержании жиров и холестерина ниже, чем в мясе курицы и индейки. К тому же, страусы живут около 70 лет, а в течении первых сорока лет они несут яйца [2, 17].

Тушу страуса характеризует высокий убойный выход и отсутствие половых различий при оценке выхода основных съедобных частей туши.

Широко используются в промышленности также кожа и жир страуса.

В связи с продолжающимся ростом количества страусоводческих ферм и поголовья страусов возникает практическая необходимость в разработке нормативных документов по вопросам ветеринарно-санитарной экспертизы, в частности предубойному осмотру и послеубойной ветеринарно-санитарной экспертизе туш и органов страусов, определению органолептических и физико-химических показателей свежести мяса страусов, а также его качественных показателей и биологической полноценности, которые позволяли бы осуществлять выпуск продукции высокого санитарного и товарного качества.

 

Часть I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

 

Глава 1. Страусоводство и его промышленное значение

 

1.1 История хозяйственного использования страусов

Тенденция хозяйственного использования страусов путём одомашнивания, отмечена впервые в Южной Африке в начале шестидесятых годов XIX столетия [64], вследствие падения численности этих птиц в природе в результате хищнической охоты на них с целью получения перьев. Живущих на воле птиц стали отлавливать и содержать на фермах. Вскоре был создан центр по разведению страусов, где главным направлением использования было получение перьев в связи с огромным в то время спросом на них на европейском рынке [91].

Существенным фактором, обусловившим прогресс в области разведения страусов, оказалось создание инкубатора, устранившего зависимость вывода птенцов от влияния естественной среды обитания.

Развитие страусоводства, связанное с перьевым бизнесом, было активизировано мигрантами из Восточной Европы. Цены на страусиные перья в 1870-1913 годах достигли небывалого уровня. Росли также цены на разводимых птиц.

Выращивание страусов с целью использования пера достигло наивысшего расцвета перед I-й Мировой Войной, когда популяция этих птиц, выращиваемых на фермах, составляла около миллиона [81]. После золота, алмазов и шерсти, вывоз страусовых перьев был на четвертом месте в экспорте товаров из Южной Африки. Начало I-й Мировой Войны, экономический спад двадцатых годов и перемены в моде быстро привели к краху европейского рынка и к упадку многих страусоводческих ферм [73]. Резко упало также мировое поголовье страусов, которое в двадцатые годы оценивалось всего в 30 тысяч. Однако уже несколькими годами позже выращивание страусов в Южной Африке начало постепенно входить в очередной период расцвета, на этот раз благодаря растущему спросу на кожу, который до самого начала восьмидесятых годов оставался там основным направлением использования страусов. Кожа страусов экспортировалась во многие страны Европы и в США. Вместе с тем, в конце восьмидесятых годов возрос интерес к страусиному мясу, содержащему мало жира и холестерина. В это время появляются многочисленные страусоводческие фермы не только в Африке, но и в Австралии, Южной Америке и в Европе [6].

В России африканские страусы появились в конце XIX - на­чале XX века, когда Ф. Э. Фальц-Фейн завез их в свое поместье Аскания-Нова в Таврической гу­бернии. Это были несколько голов сомалийских страусов, по­томки которых в очень небольшом количестве и сейчас содер­жатся в заповеднике Аскания-Нова. Нужно сказать, что эти птицы всегда содержались как зоо­логические объекты и никогда не имели продуктивного исполь­зования. По­мимо этого в зоопарке Аскания-Нова со­держится поголовье австралийских эму и южноамериканских нанду, успешно осуществляется их воспроизводство при искус­ственной инкубации [3,4]. Однако все это имеет чисто научно-ис­следовательский характер.

Можно считать, что лишь в конце 90-х годов XX века в России стало развиваться фермерское страусоводство [23].

В 1998 году в 12 км от Москвы в районе Мытищ была основана ферма “Лэмэк” по разведе­нию африканского страуса. На ферме содержится от 200 до 300 голов страусов разного возраста. Первая партия страусов была завезена из Израиля, затем стадо пополнилось птицами, выведенными из яиц, завезенных с Кипра. Впоследствии мо­лодняк поставлялся из Бельгии с фермы “Тер Лакен”. Позже было основано более 30 ферм в областях и городах Владимире, Старом Осколе, Брянске, Толь­ятти, Челябинске, Кисловодске, Анапе, Ростове, Вологде, Вол­гограде, Воронеже, Курске и других регионах. Самая северная точка, где в Рос­сии расположена ферма по разведению страусов - Сургут в Тюменской области (62° северной широты). Самая восточная точка - остров Сахалин. В 15 км от Москвы в черте г. Балашиха в племзверосовхозе “Салтыковский” так­же в 1998 году создана ферма африканских страусов черношеей разновидности. В основном страусы были завезены из Финляндии. В настоя­щее время поголовье страусов разного возраста на ферме со­ставляет около 50 голов. На ферме имеется несколько гнезд страусов репродуктивного возраста [16]. На этих гнездах получены первые в России данные, позволяющие сделать заключение о закономерностях яйцекладки, накапливается опыт технологии искусственной инкубации яиц. Фундаментальные бревенча­тые помещения и технология содержания страусов в племзверосов­хозе “Салтыковский” могут рассматриваться как пример для российских условий [20].

В Серпуховском районе Московской об­ласти создана страусоводческая ферма “Русский страус”. Общее поголовье фермы составляет шестьдесят страусов. В Орехово-Зуевском районе Московской области функционирует ферма “Страфер”. Аф­риканские страусы содержатся в опытном хозяйстве Северо­кавказского НИИ животноводства. В Волгоградской области в ЗАО "Краснодонское" содержится около 200 голов австралийских эму. В Белгородской области на птицефабрике “ПКП Казацкое” имеется несколько го­лов африканских страусов, завезенных из Молдовы.

Одновременно создаются страусоводческие фирмы в бывших советских республиках (странах СНГ). Так, в Молдавии функционирует страусоводческая фирма “Анатекс” с головным офисом и фермой в Германии. На Украине в Баришевском районе Киевской области в по­селке Березань в птицеводческом хозяйстве содержится пого­ловье страусов, а также имеется ферма под Днепропетровском. Страусоводческие хозяйства созданы в Грузии, Литве, Туркмении, Казахстане.

По предварительным данным, общее поголовье черных аф­риканских страусов и эму на фермах России составляет около 1200 голов, в республиках СНГ - не более 800 голов. Очевидно, что процесс расширения сети страусоводческих хозяйств будет нарастать.

В настоящее время наибольшую прибыль в сфере страусоводства приносит продажа птиц родительского стада, птенцов и оплодотворённых яиц для инкубации, так как спрос на эту продукцию в настоящее время максимален. [70]

В России в настоящее время с целью получения мяса разводят два вида страусов - африканского (преимущественно черношеего) и австралийского (эму).

 

1.2 Кормление страусов

Несмотря на давнюю эксплуатацию страусов человеком, вопросы научно обоснованного кормления этой птицы до сих пор стоят на повестке дня. Первопричина этой проблемы состоит в том, что при распространении страусоводческих хозяйств от истоков (Центральная и Южная Африка) в более экономически развитые регионы (Европа, Северная Америка) происходит изменение типов содержания от экстенсивного (с преимущественным использованием естественных и культурных выпасов) к интенсивному (с применением полнорационного кормления). Существуя в суровых условиях африканских пустынь и полупустынь страусы в процессе эволюции выработали способность извлекать максимум питательных веществ при минимуме возможностей и превосходят по этим показателям даже местные породы скота. В основе этой способности лежит хорошее усвоение клетчатки [121]. Наряду с круглогодичным доступом к дешёвому естественному корму, это даёт возможность добиваться высоких экономических показателей. Только к концу восьмидесятых годов прошлого века, с началом массового распространения страусов за пределы исторического местообитания, стали проводиться исследования, имеющие цель установить потребность этих птиц в важнейших пищевых компонентах [31]. В частности, сравнительные исследования показали, что для страусов энергетическая ценность кормов содержащих много клетчатки в два раза выше, чем для кур [47]. У молодых страусов низка усвояемость жира, в частности по причине отсутствия желчного пузыря [125].

В России, как и во многих других странах, вопрос кормления страусов стал основополагающим при выращивании этой птицы. Основная слож­ность заключается в специфике усвоения страусами ряда питательных веществ, отличной от таковой у домашней птицы. Перевод страусов на полнорационное кормление в условиях интенсивного типа содержания неминуемо приводит к нарушению обмена веществ, а следовательно и к нарушениям в процессе выращивания и размножения. Для установления обоснованных норм кормления страусов в России специалистами ферм проводится кропотливая работа по разработке рационов с учётом отечественных условий [18]. Примерные нормативы, которыми руково­дствуются при кормлении страусов на некоторых российских фермах приведены в таблице 1.

Так, например на ферме племзверосовхоза "Салтыковский" раци­он взрослого поголовья (родительского стада) состоит из ячменя и ком­бикорма ПК-1 в пропорции 1:1 с добавлением минеральной подкормки (ракушечник) и травяной резки или овощей по сезону. Корма даются вволю.

Таблица 1

 

Примерные нормативы энергетической потребности для кормления страусов по возрастам

 

Возраст

Компонент, %

0-3 месяцев

4-12 месяцев

старше 12 месяцев (взрослые)

страусы в период размножения

Сырой протеин

16,0

14,5

13,0

15,0

Клетчатка

9,6

10,7

10,5

10,0

Кальций

1,5

1,5

1,5

3,15

Фосфор

0,4

0,4

0,4

0,5

Натрий

0,17

0,18

0,15

0,19

Обменная энергия, кДж/кг

9,7-13

9,5-10

6,5-8,5

9,2-9,5

 

1.3 Содержание страусов

В условиях дикой природы, страусы хорошо адаптированы к условиям окружающей среды, поскольку эволюционировали вместе с ними на протяжении многих тысячелетий. При изменении условий обитания птицы стремяться или приспособиться к ним или покинуть неблагоприятные угодья. В условиях фермерского хозяйства, человек создаёт страусам особые условия существования, в которых при обеспечении пищей, водой и укрытиями, полностью ограничивает их свободу.

В мировой практике применяется два основных типа содержания страусов - экстенсивный и интенсивный. Выбор типа содержания зависит, как правило от наличия дешёвых земельных угодий, обеспеченности дешёвым фуражом и рабочей силой.

Экстенсивный путь выбирают, как прави­ло, в южных регионах с большими площадями угодий, непригодных для содержания и разведения большинства других сельскохозяйственных животных. Площадь земельных угодий должна быть не менее 40 га [117]. При этом типе содержания на участке значительной площади отгораживают один или несколько загонов, устанавливают укрытия от солнца и дождя, организуют водопой. Птица содержится на подножном корме, в некоторых случаях осуществляется ее подкормка [126]. Соответственно основные капитальные вложения приходятся на стоимость земли и ограждающих конструкций, а птица содержится в условиях, похожих на естественные. Инкубация яиц при этом типе содержания может быть естественная (под птицей), искусственная (в инкубаторе) или смешанная (часть яиц выводится под птицей, часть в инкубаторе). Основное преимущество экстенсивного типа содержания - крайне низкая стоимость содержания взрослых птиц, которая ещё больше падает с ростом их количества (при достаточной продуктивности угодий). Кроме того, при использовании естественной инкубации и выращивания птенцов, исключается и эта статья расходов. Таким образом стоимость конечной продукции чрезвычайно низка.

Однако, недостатки этой системы проистекают из её достоинств. Так, затрудняются опознание отдельных особей и контроль за их здоровьем; усложняется поиск и сбор яиц, а их транспортировка в инкубаторий по пересечённой местности может отрицательно повлиять на выводимость; наличие хищников может вызывать существенные потери среди поголовья птенцов; наконец, минимальный контакт с человеком чрезвычайно затрудняет поимку и лечение птиц.

При интенсивном типе содержания (применяемом обычно в се­верных странах, в т.ч. в России), страусы содержатся на ограниченных площадях на полнорационном кормлении, иногда с возможностью пас­тись. Инкубация яиц только искусственная. Требуемая площадь угодий редко превышает 20 га, разделённых на участки по 1-2 га (на практике обходятся ещё меньшим количеством площадей). За счёт низких затрат на землю, эта система содержания наиболее популярна [117]. При таком типе содержания особое внимание должно уделяться правильному выбору местности для строительства ферм, а также грамотному строительству и эксплуатации помещений для содержания страусов в холодный период. Эта система имеет два существенных недостатка: первый - большие затраты на корма и высокие требования к полноценности рациона; второй - серьёзные капитальные затраты на ограждения и строения (особенно в северных странах), при этом капитальные затраты на единицу площади существенно выше, чем при экстенсивном содержании. Тем не менее, плюсов у этой системы больше, чем минусов. Основным преимуществом является полный контроль за воспроизводством поголовья и возможность вести селекционную работу. Кроме того, все манипуляции с птицей существенно облегчаются, так как она от тесного контакта с человеком, становится практически ручной.

Выбирая место для будущей фермы, следует учитывать рельеф местности, инсоляцию, уровень грунтовых вод, проницаемость грунта, защиту от ветров, удаленность от движения транспорта и шумов, положение по отношению к подъездным путям и обеспечение электричеством и канализационной сетью. Рекомендуется создавать страусоводческие фермы на расстоянии не ближе 300 м от ферм других животных, 100 м от хозяйственных построек, 100 м от железной дороги, 50 м от линии высокого напряжения.

Местность, в которой должна находиться постройка для страусов, должна быть сухая и иметь соответствующий уровень грунтовых вод (не менее 1 м). Хорошо, если имеется легкий наклон местности к югу, поскольку такой склон получает больше солнечного тепла, чем плоская местность. Следует воздержаться от закладки фермы в сырой местности. Постройку следует расположить в зависимости от преимущественного направления ветров, т.е. чаще всего по линии восток-запад, с выходом на юг. Однако часто выбора нет - например, в том случае, если речь идет об адаптации уже имеющегося здания, что в большинстве случаев значительно дешевле, чем строительство нового объекта. Постройка, предназначенная для страусов, должна быть разделена на сектора, в которых будут содержаться птицы разного возраста. Сектор, предназначенный для птенцов и молодняка, должен иметь исправное отопительное оборудование. В постройке для птиц старше 6 месяцев отопление не требуется даже зимой. Размеры здания зависят от размера стада и предполагаемого объема производства. При этом следует помнить о необходимости соблюдения минимальных норм площади помещения, приходящейся на одну птицу с учетом возраста. Новые здания, предназначенные для устройства помещений для страусов, могут быть построены из любых доступных материалов (кирпич, пустотелый кирпич, дерево), однако следует избегать бетонных стен. Необходимо оштукатурить внутренние стены, что, в частности, облегчает дезинфекцию. Особых требований не предъявляется также к материалам, предназначенным для строительства и покрытия крыш. В странах с теплым климатом для взрослых птиц достаточно ставить туннели из пленки.

Высота помещения должна превышать рост взрослой особи (2,5-2,7 м) на 50 см, т.е. составлять 3,0-3,2 м (для эму - 2,5 м). Все внутренние элементы - стены, полы и потолок - должны быть гладкими, позволяющими осуществлять тщательную дезинфекцию. В помещениях для молодняка и взрослых птиц пол может быть бетонным, покрытым слоем подстилки (например, соломой), хотя отдельные исследователи [127] считают, что полы для птенцов не следует вообще застилать, поскольку у них сильно развит рефлекс клевания и они собирают буквально все на своем пути. Подстилка из соломы, поглощаемая в большом количестве, может привести к диспепсии в неразвитом еще пищеварительном тракте, и даже стать причиной гибели птенцов. Удачным решением для птенцов является пластиковая сетка (1х1 см), распростертая на колосниковой решетке, на высоте 30-40 см над полом. Помещение для птенцов должно быть спланировано таким образом, чтобы можно было его разделить на меньшие отсеки для одновременного содержания трех групп страусят - быстро, средне и медленно растущих. Кормушками для птенцов являются обычные пластиковые подносы. Поилки для птенцов имеют форму абажура, а для страусов постарше можно подготовить пластиковые миски или ванночки. Кормушки для взрослых особей должны прилегать к стене на высоте туловища птиц. Длина кормушки, предназначенной для одного страуса, должна соответствовать средней ширине птицы в одной группе.

Окна в постройках для страусов должны быть затянуты проволочной сеткой с размерами ячеек не более 55х55 мм. Естественного освещения бывает достаточно в тёплое время года. В остальное время необходимо использовать дополнительное освещение в течении нескольких часов ежедневно. В период выращивания птенцов следует избегать сквозняков. Скорость движения воздуха летом не должна превышать 0,3-0,4 м/сек, а относительная влажность в помещении должна быть в пределах 60-70 %. Следует специально выделить помещение - изолятор - для больных птиц или чувствующих недомогание, что в особенности касается птенцов в период выращивания. Желательно, чтобы высиживание протекало в отдельном здании. Для снижения опасности заражения рекомендуется выделить особое помещение для гнездования, и выводное помещение, или в крайнем случае, поместить их в наименее посещаемом месте. Перед входом в здание, и в особенности в помещении для инкубации необходимо устроить дезбарьер. Птицы, доставленные на ферму, должны обязательно пройти карантин, лучше за пределами территории фермы, в течение срока не менее 4 недель [31].

Загоны должны непосредственно прилегать к зданию и каждое помещение должно иметь особый выход к своему отдельному выгулу. Обеспечение для страусов соответствующей площади загонов, по которой они смогут свободно передвигаться, оказывает благоприятное влияние на правильное развитие в первую очередь двигательных мышц и дыхательной системы, и, кроме того, на повышение резистентности организма птиц. Отсутствие соответствующего пространства для взрослых страусов приводит, помимо различных недомоганий, к борьбе между самцами за свою территорию, особенно в брачный период. По этой же причине загоны для самцов должны быть отделены друг от друга ”нейтральными поясами” шириной 2,5-3 м, которые можно засеять или засадить кустами. Непосредственный контакт самцов друг с другом через одинарный забор может привести к боям самцов и к опасным травмам тела.

Загоны должны, как правило, иметь форму прямоугольника с закругленными углами. Для взрослых птиц длинный бок загона, независимо от количества птиц, должен составлять не менее 60 м, что обеспечивает птицам возможность бегать. Загоны следует засеивать травами. В загонах также должны быть выделены места, посыпанные песком, поскольку страусы любят принимать песочные ванны и погреться на солнце. Рекомендуется также устройство тентов для создания тенистых участков и зашиты от дождя.

Загоны для птенцов могут иметь размеры 12х6 м или 10х5 м. Две трети площади загона покрыты “искусственной травой”, остальная поверхность - песком. Загоны для страусят должны быть защищены, например, пленкой и прилегать к той части здания, которая в наименьшей степени подвержена воздействию ветра. Следует предусмотреть загоны для страусят, растущих быстро, средне и медленно [31].

Загоны для страусов в репродуктивный период должны быть устроены таким образом, чтобы гарантировать покой. Высота ограждений зависит, прежде всего, от роста (возраста) птиц. Как правило, применяется ограждение из металлической сетки высотой 1,8 м. Рекомендуется ставить вертикальные столбы каждые 3-3,5 м, поскольку ограждение должно быть настолько надежным и прочным, чтобы не покачнуться под напором птицы весом более 100 кг. Высота самой сетки должна составлять 1,5 м, над ней укрепляется деревянная рейка. Такое ограждение является более надежным, чем ограждение из жердей или досок. Доски применяются для строительства внутренних загонов для отдельных групп страусов. Тем страусоводам, которые все же решаются ставить наружные ограждения из жердей, рекомендуется, по крайней мере, для нижней части ограждения (высотой до 1 м) использовать металлическую сетку размером 55х55 мм, чтобы защитить загон от вторжения собак или других животных, которые легко могут вызвать панику среди птиц. Решительно запрещается применение сеток с отверстиями большего размера. Может случиться, что страус просунет голову в отверстие, ища пищу, а потом резко ее выдернет. При этом птица может покалечиться и даже погибнуть. Ни в коем случае нельзя ставить ограждения из колючей проволоки. Там, где содержатся взрослые птицы, особенно в репродуктивный период, нижняя часть внутренних ограждений не должна иметь сетки, чтобы лицо, собирающее яйца или выполняющее в вольере другие работы, могло в случае агрессии самцов легко и быстро покинуть территорию [31].

Примерные схемы построек для содержания страусов, которые эксплуатируются на страусоферме “Русский страус” и на наш взгляд являются оптимальными для нашей зоны изображены на рис. 1.

Рис. 1. Схема построек для содержания страусов

 

Глава 2. Сведения о систематике, биологии, анатомии и физиологии страусов

С точки зрения зоологии, страус африканский, эму и нанду относятся к общей системной единице - к бескилевым - и в рамках этой единицы образуют группу экономически используемой человеком видов птицы.

Исследования обнаруженных окаменелостей позволяют высказать предположение, что страус происходит от бегающих птиц средней величины, которые 40 - 55 миллионов лет назад обитали в степях Азии. Эволюция этих примитивных форм привела к появлению птиц-великанов ростом около 4 м, которые распространились на север до Монголии, на запад до Европы и на юг до Африки. В процессе последующей эволюции эти птицы уменьшились в размерах, стали быстрее передвигаться и уже два миллиона лет назад походили на современных страусов [31]. Еще несколько десятков тысяч лет назад страусы населяли травянистые и полупустынные равнины Ближнего Востока и Африки, достигая европейских берегов бассейна Средиземного моря. Эти птицы, однако, пали жертвой климатических изменений.

Первые контакты человека со страусом относятся к периоду 5500 лет до нашей эры. Об этом свидетельствуют многочисленные наскальные рисунки, обнаруженные на просторах теперешней Сахары.

Распространение в природе и систематика. Обычное название “страус” включает страуса африканского (Struthio camelus). Этот вид относится к классу птиц (Аves) и подклассу Бескилевых (Ratitае), в пределах которого различаются восемь отрядов. К трем среди них Struthioniformes, Rheiformes, Casuariformes - относятся бескилевые, выращиваемые на фермах. Struthioniformes в настоящее время представлены семейством “страусы” с одним существующим сейчас на свете видом - страусом африканским. Rheiformes представлены семейством “нанду” с двумя существующими видами. И, наконец, Casuariformes представлены семейством эму с одним существующим видом и семейством казуаров с тремя существующими видами.

 

Биологическая классификация бескилевых птиц, используемых для потребительских целей:

 

КЛАСС - Птицы (Аvеs)

ПОДКЛАСС - Бескилевые (Ratitае),

СЕМЕЙСТВО - страусы Struthionidae

Вид - страус африканский (Struthio саmelus)

Подвид - страус североафриканский (Struthio саmelus саmelus)

Подвид - страус массайский (Struthio саmelus massaicus)

Подвид - страус сомалийский (Struthio саmelus molybdophanes)

Подвид - страус южноафриканский (Struthio саmelus аustralis)

Подвид - страус африканский черный (Struthio саmelus domesticus)

ОТРЯД - Rheiformes

СЕМЕЙСТВО - нанду (Rheidae)

Вид - нанду серый (американский нанду, большой нанду) (Rhea americana)

Вид - нанду пятнистый (нанду Дарвина) (Pterocnemia pennata)

ОТРЯД - казуароподобные (Саsuаriformes)

СЕМЕЙСТВО - эму (Dromaidае)

Вид - эму (Dromaius novaehollandiae)

Страус африканский. Страус североафриканский (Struthio саmelus саmelus) обитает к югу от Атласных гор, область его распространения охватывает Сенегал, Нигерию, Судан и Эфиопию (Рис. 2). Он характеризуется достаточно редким волосяным покровом на макушке. Его ярко-красная шея покрыта коротким пушком. Оперение самцов - цвета вороного крыла, а концы крыльев и хвоста белые. У самок буро-серая шея и коричневые перья с более светлыми концами. Из всех подвидов они несут самые крупные яйца с наименее пористой скорлупой.

Рис. 2. ареал распространения страусов на Африканском континенте [Хорбанчук, 2002]

1 - Страус североафриканский (красношеий)

2 - Страус сомалийский (голубошеий)

3 - Страус масайский (красношеий)

4 - Страус южноафриканский (голубошеий)

 

Страус массайский(Struthio саmelus massaicus) распространен в восточной Кении и в части Танзании. Он несколько меньше североафриканского страуса. Макушка покрыта очень редкими белыми волосами, а бледно-розовая шея покрыта коротким пушком. В брачный период шея самцов становится ярко-красной. Оперение самцов коричнево-черное что отличает этот подвид от страуса североафриканского.

Страус сомалийский (Struthio саmelus molуbdophanes) распространен в Восточной Африке, главным образом в Сомали и Эфиопии. Это самый крупный из всех подвидов, отличающийся самой длинной шеей. Макушка имеет слабый волосяной покров. Кожа шеи и туловища сине-серая, а кожа голеней ног темно-красная. Оперение самцов можно описать как интенсивно черное с белыми кончиками перьев на крыльях и на хвосте, аналогично оперению страуса североафриканского.

Страус южноафриканский (Struthio саmelus аustralis) обитает в районах, расположенных к югу от реки Замбези, в частности, в Намибии, Ботсване и Зимбабве. Самый мелкий из всех подвидов. Рост самцов достигает 2,5 м. Волосяной покров на макушке еще слабее, чем у страуса сомалийского. Кожа шеи серая, покрытая густым пушком, а в брачный период она становится у самцов красной, равно как и нижние конечности до большого пальца. Самки откладывают яйца, отличающиеся достаточно выраженной пористостью скорлупы.

Страус африканский черный (Struthio саmelus domesticus),называемый также страусом из Удтсхорна. По размерам он приближается к страусу южноафриканскому, характеризуется компактным строением тела. Самцы достигают роста 2,4-2,5 м при массе тела около 120 кг, а самки - 2,2-2,3 м при массе 105-115 кг. Эти страусы появились в результате многолетнего скрещивания страуса североафриканского с южноафриканским. Они образуют наиболее многочисленную в мире популяцию страусов, выращиваемых на фермах (отсюда третий член латинского названия - domesticus), и распространены по большей части также в Южно-Африканской Республике. В результате проведенной там длительной селекции они стали отличаться от остальных подвидов более высоким качеством перьев. Кроме того, они отличаются более мягким характером и легче поддаются выращиванию на ферме [31].

Страусоводы пользуются более простой классификацией подвидов африканских страусов. Североафриканские и массайские страусы повсеместно определяются как красношеие, сомалийские и южноафриканские как голубошеие, а африканские черные как черношеие.

Сведения о биологии, анатомии и физиологии страусов.Страус является самой крупной из ныне существующих птиц мира. Рост самцов достигает 2,7 м (даже приводят цифру 3 м [74], а масса тела превышает 150-160 кг. Самки меньше, их рост достигает 2 м при массе тела 110-120 кг. Около трети роста страуса составляет длинная, гибкая шея, включающая 19 позвонков (Рис. 3), благодаря которой птицы имеют возможность свободного обследования местности в поисках корма и могут поедать листья, недоступные другим травоядным, кроме жирафа и слона. Клюв страуса широкий и плоский, с двумя ноздрями, что облегчает охлаждение; в жару он часто бывает открыт. Клюв не особенно твердый, поэтому он не может служить ни для атаки, ни для обороны.

Рис. 3. Скелет страуса

1 - грудная кость не имеет киля

2 - лонные кости срослись

3 - нижняя конечность страуса заканчивается 2-мя пальцами

 

Страусы отличаются прекрасным зрением. По некоторым утверждениям, они видят на расстоянии 3км. [127].

Благодаря высокой посадке головы и огромным глазам - глазное яблоко весит около 60 г - у страусов далекое и широкое поле зрения. Мигательная перепонка прикрывает глазное яблоко и при неблагоприятных атмосферных условиях надежно охраняет глаз от пыли и песка, в чем помощь оказывают длинные и густые ресницы. У страусов хорошо развит слух. Широкое слуховое отверстие регистрирует даже самые слабые звуки, что способствует совершенству системы защиты. Относительно слабо развито обоняние и вкус. Череп страуса пористый и образует очень тонкую защиту мозга, который у взрослой особи имеет размер небольшого куриного яйца и весит всего 30-40 г [59, 19]. Макушка страуса (темя) у одних подвидов бывает голая, у других покрыта пером.

Страусы являются моногастрическими животными. У них отсутствует зоб, однако, имеется характерное расширение пищевода, в эпителии которого расположены многочисленные железы; их выделения облегчают продвижение поглощенной пищи. Стенки пищевода обильно снабжены круговыми мышцами. Крупный желудок состоит из железистой и мускульной частей. В обширной железистой части пища подвергается действию энзимов (рН содержимого составляет 2,8). В мускульной части происходит растирание поглощенного и частично переваренного корма с помощью мелких камешков и гальки в существенном количестве (до 1,5 кг) [115]. Толщина стенок мышечного желудка страуса доходит до 92 мм. Он состоит из гладких мышц и покрыт сильно сморщенным эпителием [78]. Пищевая масса, размельченная в этой части желудка, перемещается далее в тонкую кишку, в которой находятся многочисленные железы, выделяющие кишечный сок. Слизистая оболочка тонкой кишки обладает многочисленными кишечными ворсинками, которые облегчают поглощение питательных компонентов.

Относительно длинная слепая кишка (каждый из ее двух отрезков насчитывает 50-100 см в длину) имеет внутреннюю спиральную складку слизистой оболочки, которая облегчает смешивание содержимого и стимулирует ферментационные процессы. Толстая кишка имеет длину 10-12 метров. Помимо поглощения воды, здесь, как и в слепой кишке, происходит интенсивная ферментация пищевой массы - разложение клетчатки благодаря богатой бактериальной микрофлоре и возникновение летучих жирных кислот и в особенности уксусной кислоты, поставляющей около 76 % всей метаболической энергии, используемой для удовлетворения жизненно необходимых потребностей организма [121]. Конечный отрезок толстой кишки переходит в одну из трех камер (частей) клоаки. В противоположность другим видам сельскохозяйственной птицы, страусы выделяют кал и мочу раздельно. По сведениям Скадхауге и др. [118], общая средняя длина желудочно-кишечного тракта взрослых страусов с массой тела от 105 до 131 кг, живущих в естественных условиях, составляет вместе с более чем метровым пищеводом и двумя слепыми кишками около 24 м. По данным Сварта и др. [121], длина желудочно-кишечного тракта (без пищевода) у молодых страусов составляет 1090 см при массе тела 7 кг. Самой длинной частью желудочно-кишечного тракта является толстая кишка, составляющая около 50 % всей его длины (Рис. 4).

Рис. 4. Схема пищеварительной системы страуса [Kistner C. et al., 2002]

1 - железистый желудок

2 - мышечный желудок

3 - тонкий кишечник

4 - отростки слепой кишки

5 - толстый кишечник

 

В процессе эволюции страусы утратили способность к полёту. В связи с этим у них отсутствует киль грудины и слаборазвита мускулатура крыльев. Крылья, однако, выполняют многие важные функции и служат, в частности, для зашиты или обмахивания в жару, а у самцов они играют существенную роль во время брачных танцев. Кроме того страусы сохранили воздушные мешки. По данным Дженсена и др. [74], количество вдохов у взрослого страуса колеблется от 6 до 12 в минуту, а в жару оно может возрасти даже в пять раз. Хотя температура, измеренная в клоаке, составляет 38-40 °С, однако при гипертермии наблюдается возрастание температуры даже до 46 °С. С помощью лёгких страусы приспособились поддерживать температурный гомеостаз, испаряя влагу с выдыхаемым воздухом [51].

Строение сердца и основных кровеносных сосудов у страуса такое же, как и у других видов птиц, например, у курицы [31]. Количество ударов сердца взрослого страуса составляет от 28 до 36 в минуту, в то время как у молодых птиц - от 60 до 164. Красные кровяные тельца имеют ядра эллиптической формы.

Пол взрослых особей можно легко распознать по характерному окрасу оперения. Самцы черные, только неровные перья крыльев и хвоста белые. Оперение самок коричнево-серое с более светлыми концами перьев. В жарком африканском климате перья служат эффективной защитой от солнца, а ночью, особенно в полупустынных пространствах, уменьшают потери тепла. У страусов нет копчиковой железы, выделения которой у других птиц пропитывают оперение. На воле страус является стадной птицей и живет семьями или стаями в течение всего года. В естественных условиях в сентябре начинается брачный период. У самцов в результате повышенного выделения половых гормонов становятся красными ободки вокруг глаз, области клюва и голени (интенсивность цвета может быть различной).

Каждый вновь созданный гарем (самец и 3-4 самки) покидает стадо и отправляется на свою территорию, бдительно охраняемую самцом, который, особенно ночью, зычным писком отпугивает потенциальных соперников. Радиус такой территории может составлять даже 800 метров.

Хотя страусы в принципе являются полигамными птицами, в их среде встречаются и случаи моногамии. Однако, как правило, один самец связан с несколькими самками, одна из которых является доминирующей, а остальные, называемые сопутствующими, расположены ниже в социальной иерархии гарема. Место для гнезда выбирает самец, обычно в центре своей территории, по возможности во впадине, или он выгребает в песке неглубокую ямку (20-30 см) диаметром 1,5-2,5 м [17]. В течение 20-30 дней доминирующая самка откладывает 10-15, а сопутствующие - по 5-8 яиц [39]. Ночью высиживанием и опекой гнезда занимается самец, а днем - доминирующая самка, серое оперение которой менее заметно, что делает менее вероятным обнаружение его хищниками [120]; у других бескилевых - эму и нанду - птенцов высиживает исключительно самец [74]. В течение дня доминирующая самка уступает место в гнезде сопутствующим самкам, которые сразу после кладки яйца покидают гнездо.

Высиживание продолжается около 6 недель [2]. Страусята в возрасте нескольких недель учатся под опекой родителей добывать пищу. Они быстро становятся независимыми, однако нормальных размеров достигают только в возрасте 16-18 месяцев. Страусы живут по несколько десятков лет, а половой зрелости дикие птицы достигают к 4-5-му году жизни [31].

В естественных условиях, за исключением периода воспроизводства, значительную часть дня страус проводит в поисках пищи, проходя за день до 40 км. Основным кормом страусов, населяющих обширную, полупустынную или травянистую африканскую саванну, являются растения. Они питаются семенами, ягодами, листьями, корешками и молодыми побегами растений. Помимо растительной пищи, ценным питанием для страусов являются насекомые иих личинки, улитки, ящерицы, мелкие млекопитающие и даже яйца других птиц [31].

Страусы в процессе эволюции выработали ряд удивительных особенностей, способствующих экономии воды в организме, благодаря которым они лучше переносят обезвоживание, чем газели и в этом отношении очень похожи на верблюдов [48].

Кроме страусов к бескилевым относятся также австралийские эму и казуары, а также южноамериканский нанду. Эти птицы отличаются от страуса африканского многими признаками, в первую очередь размерами и массой тела. Эму и нанду также содержатся на фермах, поскольку существует мнение, что их легче разводить. Основным направлением их использования является производство мяса, кож и жира. Однако эти птицы, особенно нанду, выращиваются на фермах значительно реже, чем африканские страусы. Они меньше по размеру и, соответственно, дают меньше продукции, поэтому не пользуются таким интересом у фермеров.

Семейство эму относится к отряду казуароподобных с одним существующим в настоящее время видом Dromaius novaehollandiae. После страуса африканского эму является второй по величине птицей мира. Он распространен на всей территории Австралии. Взрослые особи достигают высоты 1,8 м, а средняя масса тела составляет 55 кг. Оперение птиц коричнево-черное. Голова черная с голубым оттенком по бокам. В противоположность страусам африканским, у эму шея и голени имеют оперение. Перья разрозненные, “пушистые” . Отсутствуют маховые и правильные перья. У эму отсутствует зоб. Эти птицы, как и страусы, не способны летать - у них слабо развиты мышцы грудной клетки, строение крыльев, костные элементы которых сокращены. Длинные нижние конечности оканчиваются тремя пальцами. Эму может бегать со скоростью до 50 км/ч, он также хорошо плавает. Он обитает на открытых, равнинных пространствах и в негустых лесах. Эму всеядная птица, но отдает предпочтение растительной пище. Эму, как правило, моногамны. В естественных условиях птицы живут свыше 30 лет, а половой зрелости достигают в возрасте 2-3 лет. Гнездо организует самец, чаще всего под кустом или под деревом. В гнезде обычно находится 9-10 яиц, а иногда даже 20. Самка эму, отложив яйца, покидает гнездо для знакомства с новым партнером, однако в большинстве случаев в следующем сезоне она возвращается к первому партнеру. В естественных условиях высиживанием яиц и опекой птенцов занимается исключительно самец. Высиживание длится около восьми недель. В этот период он питается крайне редко - раз в 4-5 дней или даже реже - раз в 10-14 дней, теряя при этом до 30 % массы тела.

Помимо страуса и эму к бескилевым следует отнести также нанду, который живет в Южной Америке. Он значительно меньше своего африканского соплеменника, рост его 1,5-1,6 м при массе тела 35-40 кг. По внешнему виду нанду отличается от африканского страуса отсутствием выпуклого хвоста; шея и голени имеют сплошное оперение, а конечности оканчиваются тремя пальцами. Нанду отличаются великолепным зрением, хорошо плавают и быстро перемещаются на суше. Оперение серое или серо-черное. Перья разрозненные. Отсутствуют правильные перья. У нанду отсутствует зоб.

В пределах семейства Rheidае различаются два вида. Первый вид - нанду серый, или американский (Rhea americana), имеющий рост 1,7 м и массу тела 30 кг. Самцы несколько крупнее самок. В окраске преобладают серо-коричневые цвета, а макушка, шея, спина и грудь черные. Хотя нанду серый не способен летать, однако его крылья сохранили достаточно крупные размеры. Крыльями нанду помогает себе на бегу, особенно при резких поворотах. При возникновении опасности он спасается бегством или скрывается в зарослях, прижимаясь к земле и вытягивая шею. Нанду обитает в восточной Бразилии, Аргентине, Парагвае и Уругвае, обычно в степи, в низко расположенных местностях (пампасы), чаще вблизи рек.

Другим видом является нанду пятнистый, или нанду Дарвина (Рterocnemia pennata). Он ниже нанду американского примерно на 10 см и легче на 5 кг. Средняя длина тела взрослых особей составляет 95см. Оперение коричневое с белыми пятнышками. Он обитает в степях и в местностях, обильно заросших кустами. Он обитает на территории от юго-восточного Перу до Патагонии. Различаются 3 подвида пятнистого нанду, из которых один населяет вершины Анд до высоты 5000 м над уровнем моря. Нанду - это птицы всеядные, они питаются в основном растительной пищей, а также насекомыми и мелкими позвоночными. В естественной среде нанду живут крупными стадами, насчитывающими до 100 особей обоего пола. Как правило, это полигамные птицы, случаи моногамии встречаются редко. При приближении периода воспроизводства стадо - в результате боев самцов - делится на группы (гаремы). Каждая группа состоит из одного самца и 3-6, а иногда даже 10 самок. В период воспроизводства самец копулирует со всеми самками, которые в течение 7-10 дней несут от 10 до 40 яиц. Затем самки покидают территорию в поисках нового партнера. Высиживанием яиц и воспитанием потомства занимается исключительно самец. Период высиживания продолжается около 6 недель. Полного роста молодые нанду достигают в возрасте 5-6 месяцев.

 

Глава 3. Продукция страусоводства и её пищевая ценность

 

Мясо

Мясо страуса зарубежом имеет достаточно долгую историю пищевого использования и свои особенности реализации. Так, если для реализации оптом и на предприятия общественного питания и переработки мясо может быть отпущено тушами, полутушами и окороками, то для продажи через розничную торговую сеть мясо страуса делят на отдельные мышцы. Подавляющую часть мышц получают с задних конечностей страуса, но одну из наиболее ценных мышц - с тазовой части птицы. По разным данным (83, 77) существует 20-23 мышцы, имеющие в каждой стране - производителе или потребителе страусиного мяса свои исторически сложившиеся или специально придуманные названия, а зачастую и свой каталожный номер. В разных странах эти названия не совпадают или частично совпадают, что приводит к существенной путанице и недоразумениям. При определении отдельных мышц в научных исследованиях обычно приводятся их латинские наименования.

К настоящему времени в иностранной литературе уже появилось некоторое количество научных данных о мясе страусов. Так, Палеари и др. [94] исследовали мясо африканского страуса, импортированное из Франции и Израиля. В своей работе они указывают на более низкое содержание холестерина в мясе страуса по сравнению с мясом индейки и мясом крупного рогатого скота - в среднем 33,8 мг/100г мяса и незначительное количество жира - в среднем 1,6 %, что также гораздо ниже, чем у говядины и мяса индейки. В Институте Генетики и животноводства Польской Академии Наук в страусином мясе было определено содержание холестерина. Образцы мяса были взяты из двух самых крупных мышц бедра птиц в возрасте 12-14 месяцев. Среднее содержание холестерина составило свыше 60 мг/100 г ткани [31]. По данным [69] содержание холестерина в мясе африканского страуса может достигать 73 мг/100 г. Хорбанчук [31] установил, что мясо страусов характеризуется низким содержанием жиров (0,9 и 1,4 %, соответственно в сыром и вареном мясе) которое значительно ниже, чем в говядине или в мясе кур-бройлеров. С другой стороны, это мясо не уступает говядине по уровню белка. Исследователями [94] выявлена низкая калорийность мяса страуса - всего 103 ккал на 100 г мяса по сравнению со 116 и 121 у индюшатины и говядины соответственно.

Авторы подчёркивают, что более высокое содержание в мясе страуса белка и соотношение белка к жиру позволяет страусятине выгодно отличаться от говядины и индюшатины [24, 31, 94].

Несмотря на то, что общий состав жирных кислот в мясе страуса похож на таковой в мясе индейки и крупного рогатого скота, количество полиненасыщенных жирных кислот выше у страусятины, что подтверждает высокие диетические свойства этого мяса [94]. С точки зрения содержания насыщенных и мононенасыщенных, жирных кислот мясо страусов приближается к мясу кур-бройлеров, однако содержит меньше таких соединений, чем говядина. Содержание полиненасыщенных жирных кислот в сумме жирных кислот в мясе страусов, безусловно, самое высокое - 32-36 %, в то время как в мясе кур-бройлеров оно составляет 20 %, а в говядине всего 5 % [31]. Страусиное мясо отличается высоким содержанием линолевой и линоленовой кислот [103, 107]. Отношение жирных насыщенных кислот к мононенасыщенным и полиненасыщенным в мясе страусов определяется как 1:1:1, что особенно существенно с точки зрения диетического питания [107].

В связи с тем, что мясо страуса реализуется потребителям отдельными мышцами, а не отрубами, представляет интерес работа Cэлеса [103], в которой исследовалось содержание холестерина и жирных кислот в некоторых отдельных мышцах. Данные исследований показали, что содержание холестерина в отдельных мышцах может существенно отличаться (так, в данном случае от 56,61 мг/100 г до 71,12 мг/100 г), тогда как общее количество насыщенных, мононенасыщенных и полиненасыщенных жирных кислот приблизительно равно и отличия наблюдаются лишь в их процентном соотношении.

Хорбанчук и др. [67] в своей работе исследовали содержание холестерина и состав жирных кислот у различных подвидов африканского страуса - черношеего, голубошеего и розовошеего и установили, что содержание данных веществ у подвидов не имеет существенного отличия.

Мясо страусов отличается также низким содержанием натрия - 43 мг/100 г (т.е. его можно рекомендовать лицам, страдающим повышенным артериальным давлением) [50], а также относительно высоким содержанием железа - 2,3-2,4 мг/100 г ткани [110]. В целом содержание минеральных веществ в мясе страусов приблизительно равно таковому в говядине и индюшатине [94] и не имеет существенных отличий между отдельными мышцами [104].

Также в ряде исследований упоминается сравнительно высокий конечный рН мяса страуса по сравнению с мясом индейки [94, 104].

Убойный выход. Обычно страусов подвергают убою в возрасте 12-14 месяцев с целью получить не только мясо, но и кожу. Однако известно, что кожа достигает своего оптимального размера в 120 дм2 задолго до 14-ти месячного возраста, когда достигаются оптимальные качественные показатели, такие, как форма фолликулов и толщина кожи [84]. Таким образом, возраст убоя птицы может варьировать в зависимости от продукта, который производят на данной конкретной ферме. Ряд экспериментов показывает, что методы предубойного оглушения птицы влияют на качественные показатели мяса. Так, использование электротока большой величины или оглушение с помощью иглы и короткий интервал между оглушением и обескровливанием могут положительно влиять на некоторые показатели мяса [79]. Данные Циллерса и др. [46] показывают, что при равных условиях половые различия среди африканских страусов в части скорости набора массы тела и максимального веса в возрасте, когда обычно производится убой практически отсутствуют. Исследования показали, что нет половых различий и в убойном выходе, при том, что среднее отношение массы туши к живому весу птицы равно около 58 % [85], что, безусловно, имеет большое практическое значение для производства страусятины. В среднем туша страуса состоит из 60 % мяса, 25 % костей и 15 % жира по весу, при этом на долю ног приходится 70-74 % веса туши [117].

Описание цвета мяса страуса варьирует от тёмно-красного до вишнёво-красного и, таким образом, имеет более насыщенный цвет, чем говядина. Влияния пола птицы на цвет мяса исследованиями не установлено [86].

Вкусовые качества страусиного мяса. Вкусовые качества мяса страуса исследовались экспертами путём анонимного сравнения с лучшей говядиной. Филе и фарш африканского страуса и эму оказались несколько более сочными, чем говядина. Замороженные и хранившиеся в течение полугода куски мяса африканского страуса и эму полностью сохранили свои свойства [34]. Хотя говяжья вырезка была признана слегка превосходящей страусиную по своим вкусовым особенностям, по мнению экспертов этого недостаточно для того чтобы уменьшить общую предпочтительность страусиного мяса перед говядиной. В целом, как мясо, так и фарш из мяса африканского страуса и эму по большинству органолептических критериев оценки схожи с мясом крупного рогатого скота [122]. Тем не менее, несмотря на объективную привлекательность страусятины, для потребителей мяса, в частности, в США, где стаусоводство уже достаточно распространено, решающим фактором, на основании которого делается выбор, остаётся цена продукта [53, 58, 116, 123].

Таким качеством как нежность страусятина сравнима с индюшатиной, а низкое содержание коллагена вкупе с уже упоминаемым высоким содержанием белка делает это мясо лучше переваримым чем говядина и позволяет лидировать в сравнительной оценке потребителями по этим параметрам [94].

Исследования срока хранения в холодильнике мяса и фарша в вакуумной упаковке, хранившегося при температуре - 40 °С, а затем дефростированных, показали, что свою органолептическую привлекательность оно сохраняет до 14 дней, после чего более половины площади поверхности мяса становится бурым и появляется неприятный запах. Аэробная обсеменённость сохраняется в пределах нормы до 14 дней, после чего скачкообразно возрастает и к 21 дню мясо становится непригодным в пищу. Показатель рН мяса составлял 6,2-6,4 до четырёх недель хранения, тогда как у фарша к четвёртой неделе хранения падает с 6,4 до 5,7. Таким образом оттаявшее мясо в вакуумной упаковке остаётся привлекательным для потребителя при хранении в холодильнике не более 14 дней. Авторы исследования рекомендуют использовать его в течении 10 дней после размораживания [92].

Популярность мяса африканского страуса на мировом рынке провоцирует недобросовестных торговцев на подмену его другой мясной продукцией, в частности мясом эму, имеющим ряд отличных от мяса африканского страуса показателей пищевой ценности. Для борьбы с подобной фальсификацией итальянскими специалистами используется полимеразная цепная реакция [49].

Показатели пищевой ценности мяса других представителей бескилевых - эму и нанду изучены существенно хуже, чем африканских страусов. Однако известно, что за небольшими исключениями имеют одинаковое строение мясной туши и процент выхода мяса. Мясо всех бескилевых характеризуется высоким конечным рН, который благоприятствует сохранению цвета мяса и его влагоудерживающей способности при кулинарной обработке, однако является нежелательным для сохранения качества и аромата мяса. Причиной данной особенности может быть реакция организма птицы на стресс. В целом мясо бескилевых имеет особенности как мяса птицы (нежирное, демонстрирует быстрое снижение рН), так и говядины (интенсивная красная окраска) [55, 105, 106, 108, 109].

Данные исследований могут иметь незначительные различия по разным параметрам, что, безусловно, связано в первую очередь с особенностями содержания, кормления и убоя, а также с генетическими особенностями, полом и возрастом птицы.

Кожа и перья

Ценным продуктом страусоводства является кожа [27].Кожа страусов считается продуктом высшей категории и часто сравнивается с высококачественной кожей таких животных, как змеи, крокодилы и слоны. Но ценится она выше, в частности, по причине более высокой прочности и водонепроницаемости. Торговля кожей страусов в настоящее время в мире не подвергается ограничениям, поскольку эта птица относится к домашним птицам, содержащимся в условиях фермы исключительно с потребительскими целями. Цена кожи формируется в зависимости от ее естественной фактуры. Пользуется наибольшей популярностью и одновременно является самой дорогой кожа на спине и груди с характерным пузырчатым рисунком. Из другого типа кожи, покрытой ороговевшими пластинами, расположенной спереди на цевке птицы делаются ковбойские сапоги, которые в США стоят несколько сотен долларов. Чтобы получить самую лучшую кожу, страусов следует подвергать убою в возрасте около 14 месяцев. Тогда от одной птицы можно получить до 1,6 м2 качественного сырья [59]. Кожи страусов являются товаром, который в последнее время пользуется большим спросом, что проявляется в Европе предложениями многолетних контрактов на производство этого сырья. Основными мировыми потребителями страусиных кож являются Франция, Италия, Испания и Япония [31].

В течение многих лет в Африке организовывалась охота на живущих в естественной среде страусов с целью получения ценных перьев. В начале XX века в Лондоне, Париже и Нью-Йорке происходили даже широкомасштабные аукционы страусиных перьев. В настоящее время значение страусиных перьев с точки зрения приносимого дохода является небольшим, и получаемая при этом прибыль составляет около 10 % всех прибылей, получаемых от продажи продукции страусоводства. Самыми ценными являются белые перья, которые вырастают только у самцов на крыльях и на хвосте, они используются в изобразительном и декоративном искусстве. Остальные перья, благодаряих антиэлектростатическим свойствам, используются в оптике и в электронике для удаления пыли [31].

Самым лучшим периодом является возраст 14-16 месяцев, когда оперение уже полностью оформилось. При получении перьев после убоя одна птица дает в среднем 1-1,2 кг коротких перьев (менее 22 см), а также 0,4-0,5 кг средних и длинных перьев (более 22 см) [111].

Яйца

Яйца страусов, помимо использования в пекарном производстве, могут быть предметом нормальной повседневной еды. Относительно продолжительное время варки связано с большой массой страусиного яйца, которое в среднем весит около 1500 г [1, 30] и по размеру в 25 раз больше куриного яйца. Страусиное яйцо массой 1650 г содержит около 1000 г белка и 320 г желтка, что представляет собой изрядную порцию ценных питательных компонентов [31].

Интерес к страусиным яйцам как к предмету питания наблюдается главным образом со стороны ресторанов, которые в поисках оригинальности и экзотики могут предлагать клиентам яичницу из одного страусиного яйца, предназначенную для 8-10 человек. Кроме того, многие индивидуальные потребители покупают страусиные яйца лишь в особых случаях, например, ко дню рождения или к годовщине свадьбы. Только с такой точки зрения (поиски экзотических решений) следует рассматривать возможность использования страусиных яиц для повседневного потребления [66]. Страусиные яйца считаются ценным и по-прежнему дефицитным репродукционным материалом, который в условиях бурного развития страусоводства находит все большее количество потребителей. В настоящее время цена одного пищевого страусиного яйца колеблется от 10 до 15 долларов, и, несмотря на это, спрос во много раз превышает предложение.

С точки зрения пищевой ценности страусиного яйца особенно существенно содержание в нем холестерина, а также жирных кислот, т.е. тех компонентов, которые все чаще становятся предметом особой заинтересованности потребителей [68]. Из имеющихся данных [102] следует, что с точки зрения содержания холестерина в яичном желтке, страус занимает промежуточное положение между индюком и уткой, цесаркой или перепелкой и что в этом отношении он ближе всего к курице. Следует отметить относительно высокое содержание полиненасыщенных жирных кислот в общем содержании жирных кислот в желтке страусового яйца [68, 102]. Кроме того, отношение полиненасыщенных кислот к насыщенным в яйцах страуса (и цесарки), по сравнению с другими видами домашней птицы, является самым низким. Это указывает на то, что страусиные яйца обладают самыми высокими диетическими свойствами [31].

Жир

В последнее время на рынке пользуется спросом жир страусов и других бескилевых. Наиболее ценный жир у эму. Он почти на 100% состоит из триглицеридов, а ненасыщенные кислоты составляют в нем до 2/3 всех жирных кислот [31]. Жир бескилевых, который служит для производства масла, состоит на 65 % из ненасыщенных жирных кислот, имеющих от 16 до 18 атомов углерода, и при этом не содержит кислот, имеющих 20 и 22 атомов углерода в цепи. Кроме того, этот жир содержит короткие и ненасыщенные жирные кислоты (12 % двойных связей и 1 % тройных связей). Он почти полностью состоит из триглицеридов, его можно соединять с другими компонентами (в мазях и кремах). Наконец, он не содержит фосфолипидов, чем объясняется его способность к глубокому проникновению в кожу человека, в которой эти связи отсутствуют. Масло, полученное из жира, в первую очередь эму и страусов, оказывает бактерицидное, антиаллергическое и противовоспалительное действие [42]. Мази, приготовленные на основе жира бескилевых, применяются в настоящее время при болях в мышцах и при воспалениях суставов. В США и в Западной Европе, а в последнее время и в Словакии, становится популярным производство косметики, основанной на этом продукте. Благодаря способности глубоко проникать и увлажнять кожу, этот жир является компонентом мыла и бальзамов.

От страуса после убоя получают 5-7 кг жира, а от чрезмерно жирных птиц даже 14-16 кг. От эму в возрасте 50 недель после убоя можно получить до 4 литров жира [89], а в возрасте 70 недель - свыше 9 литров, что составляет около 30 % веса туши. [57], при этом на состав жира можно влиять, используя специальную диету [38].

 

Глава 4. Болезни, отмечаемые у страусов

 

В большинстве случаев при заболевании страусов этиологическими факторами являются вирусы, бактерии и микофлора, встречающиеся также и у птиц других видов. Более специфическими являются наружные и внутренние паразиты страусов.

 

4.1 Основные заразные болезни

Болезнь Ньюкасла. Она вызывается парамиховирусом (Paramyхovirus) - серотип I (PMV-1) [43, 75]. Вирус распространяется перевозимыми птицами, а также лицами из обслуживающего персонала фермы. Заражение происходит дыхательным или кормовым путем, а также через кожу или слизистую оболочку, например, клоаки. Смертность птиц очень высокая - у 3-4-месячных страусов она достигает 80% [71, 75, 101, 112]. Стадо, пораженное болезнью Ньюкасла, должно быть ликвидировано.

Грипп птиц. Это заболевание вызывается вирусом из семейства Orthomyxoviridae, тип А. Болезнь встречается преимущественно в Южной Африке. До настоящего времени у страусов выявлено несколько типов этого вируса, в частности, H7N1, H5N9, H5N2, H9N2 [32, 129, 101, 128, 76, 80]. Он особенно опасен для птенцов по причине высокой заболеваемости и смертности, которая у птенцов в возрасте нескольких дней может составлять до 60 % [100] и даже до 80 % [63].

Оспа птиц. Она вызывается вирусом из семейства Avipoxviridae. Болезнь зарегистрирована, главным образом, в США и Израиле [72]. По мнению Вандервудт-Ярвис [127], наиболее восприимчивы к птичьей оспе страусы до 4-го месяца жизни. Смертность доходит до 15% [74]. Возможно почти полное предотвращение болезни с помощью прививки в двухнедельном возрасте вакциной против птичьей оспы, которая вводится в перепонку крыла [97].

Крымско-конголезская геморрагическая лихорадка, вызываемая вирусом из семейства Буньявирусов, у страусов протекает бессимптомно. Среди незначительного количества птиц, исследованных в Южной Африке, 24% имели антитела к этой болезни. Также сообщалось о заболевании людей, работающих на страусиных бойнях. У страусов вирус можно изолировать из крови и внутренних органов. Из мышечной ткани вирус изолировать не удалось, однако он обнаруживается там с помощью полимеразной цепной реакции [45]. Хотя в РФ у страусов вирус не обнаруживался, следует быть внимательным при импорте живой птицы или мясопродуктов из стран с неблагоприятной эпизоотической обстановкой по этому заболеванию.

Сибирская язва. Страусы - единственная птица, восприимчивая к сибирской язве. Течение болезни сверхострое или острое, проявляется лихорадочным состоянием и быстроразвивающейся септицимией. Заболевание вызывается заглатыванием бактерий или спор Bacillus anthracis. Также сообщается о возможности передачи заболевания кровососущими насекомыми. Симптомы болезни характерны: лихорадка, нарушение координации движений, может раздуваться горло. Из клоаки и ноздрей выделяется кровь [117]. Диагностика проводится обычными для сибирской язвы методами. Есть сообщения о применении с профилактической целью вакцины для КРС и специфической вакцины из сибиреязвенных спор [15].

Аспергиллёз. Болезнь вызывается плесневыми грибками Aspergillus fumingatus, Aspergillus flavus и Aspergillus niger - вырабатывающими сильные токсины [98]. Аспергилёз особенно опасен для птенцов и молодых птиц, у которых не выработан еще иммунитет.

Туберкулёз. Имеются сведения о нескольких случаях заболеваемости страусов в зоопарках туберкулёзом, вызываемым Мycobacterium avium [15].

Кандидоз. Грибок Candida albicans распространен достаточно широко и обычно поселяется в желудочно-кишечном тракте. Заражение, как правило, происходит при снижении сопротивляемости организма птицы в результате длительных стрессов, недокорма или нехватки витаминов, особенно витамина А.

Эймериоз. Болезнь вызывается паразитарными простейшими - микрококками (Coccidia) из семейства Eimeria. Наиболее восприимчивы к заболеванию молодые страусы, у которых болезнь обычно протекает тяжело. Взрослые птицы обычно отличаются хорошей сопротивляемостью к кокцидиозу [63, 93, 119]. Важным фактором в преодолении кокцидиоза является систематическая дезинфекция помещений.

Сальмонеллез. У страусов чаще всего отмечается Salmonella enteridis [44]. Важную роль в этиологии сальмонеллеза играет отсутствие надлежащих условий содержания птиц, что снижает сопротивляемость организма птиц. Птицы, перенесшие заболевание или переболевшие без симптомов, становятся носителями сальмонелл, локализующихся не только в желудочно-кишечном тракте, но также и в печени и яичниках.

Микоплазмоз. Как правило, вызывается Mykoplasma synoviae и Mykoplasma gallisepticum. К этому заболеванию восприимчивы главным образом страусы в возрасте до одного года. Птицы, переболевшие без симптомов, обычно становятся носителями. Распространению микоплазмоза благоприятствует отсутствие надлежащих условий содержания - недокорм, нехватка витаминов, плохая вентиляция, высокая влажность.

Микроспоридиоз. Микроспоридии - облигатный внутриклеточный протозойный паразит, поражающий всех позвоночных и многих беспозвоночных животных. У страусов микроспоридии вызывают поражение тонкого кишечника, вплоть до хронического энтерита. Наличие микроспоридий в кишечнике страуса может повлиять на санитарное состояние и пищевую безопасность мяса (туш) [60].

Кампилобактериоз поражает, как взрослых птиц, так и птенцов, при этом взрослые птицы болеют бессимптомно (являются носителями), а у птенцов в возрасте от 0,5-4 месяцев проявляется высокая заболеваемость и смертность. Campylobacter jejuni и Campylobacter coli вызывающие заболевания у страусов, встречаются повсеместно и поражают широкий спектр животных. У молодых страусов болезнь вызывает некротический гепатит [96].

Клещи могут вызывать у страусов хроническую потерю перьев, сопровождающуюся зудом. Поражение клещами может влиять на рост и развитие страусов, а также на их яичную продуктивность. С клещами из семейства Pterolichidae успешно борются применением ивермектина [65]

Гельминтозы у страусов вызывают ряд паразитов, такие как цестоды Houttuynia struthionis и нематоды Libyostrongylus douglassi, Codiostomum struthionis, Dicheilonema spicularum. Наиболее патогенной считается Libyostrongylus douglassi, которая является причиной гибели до 50 % всех птенцов в возрасте до 6 месяцев в Южной Африке [36, 37]. Другие виды гельминтов, хотя и являются менее патогенными, также способны причинять существенный экономический ущерб хозяйствам, не уделяющим достаточного внимания профилактике и борьбе с гельминтозами [56, 62].

Гистомоноз у нанду отмечался в США и Канаде с явлениями поражения желудочно-кишечного тракта и высокой смертностью на фоне благоприятной эпизоотической обстановки по гистомонозу в округе [82]. Исследователями предполагается высокая вероятность передачи инфекции страусам от пролётных птиц [52].

Криптоспоридиоз у страусов протекает с симптомами диареи, респираторных нарушений, синуситов и конъюнктивитов. При скрытом течении заболевания Cryptosporidium spp. поражает респираторный тракт, участки толстого кишечника, фабрициеву сумку и клоакальный копродеум. У птенцов криптоспоридии могут провоцировать выпадение клоаки [33, 41, 90, 95, 119, 124].

При выявлении инфекционных болезней страусов оценку продуктов убоя проводят с учётом действующих “Правил ветеринарного осмотра убойных животных и ветеринарно-санитарной экспертизы мяса и мясных продуктов” (1988).

 

4.2 Основные незаразные болезни

Воспаление пуповины и желточного мешка. Смерть птенцов может наступить уже в течение 24 часов после заражения. Много случаев этой болезни являются результатом недооценки опасности и неправильного ухода за птенцами после инкубации, а также неправильной техники инкубации и дезинфекции инкубационных яиц, инкубаторов и аппаратной.

Аэросаккулит. Заболевание, которое часто является результатом длительного содержания страусов в плохих условиях, вследствие чего происходит снижение резистентности организма и птица легко подвергается воздействию бактериальных или вирусных агентов.

Неправильное питание или недокорм являются частой причиной деформации конечностей, напоминающей пероз, что встречается преимущественно у растущих птиц [31]. Заболевание связано с нарушениями состава минералов, что сопровождается колебаниями кальциево-фосфорного равновесия, нехваткой кальция или нехваткой витамина D. Причиной деформации конечностей может быть также гиподинамия, а также частые стрессы и плохие, скользкие полы. Здесь не исключается также влияние генетических факторов, действие которых можно исключить продуманным отбором и подбором репродуктивного материала [54].

У птенцов в течение первых двух недель жизни иногда встречается явлениеразъезжания ног.В этом случае следует связывать ноги птенцам пластиковой лентой на ширину нормального шага. По истечении нескольких дней ситуация должна исправиться.

Скрученные пальцы. Птенцы, пораженные этим заболеванием, избегают хождения и большую часть времени проводят в сидячем положении. Причина заболевания связана, по-видимому, не только с условиями среды, но здесь возможно также и влияние генетических факторов [63]. Необходимо хирургическое вмешательство.

Явление латеральной тибиотарсальной ротации конечностей - одно из заболеваний, поражающее пояс нижних конечностей страусов. Встречается у птенцов в возрасте от 2-х недель до 6 месяцев, обоих полов. В подавляющем большинстве случаев страдает правая конечность. Болезнь полиэтиологична - заболеваемость зависит от наследственности, питания содержания и интенсивности роста. Это заболевание вносит большой вклад в смертность птенцов [40].

В результате действия стресс-факторов страусы часто впадают в панику, что может быть причиной травм. Напуганная птица может с большой силой наткнуться на ограждение [54]. К серьезным повреждениям и даже к переломам ног может привести скользкая поверхность. Если в выгуле скользко, птицы должны оставаться в помещении.

Заглатывание посторонних предметов, например, кусков дерева, коробок или гвоздей, часто кончается смертью вследствие закупоривания или прободения пищевода или печени. Рекомендуется тщательная проверка помещения и вольеров и удаление всех предметов, которые могут представлять потенциальную опасность; страусы могут глотать самые неожиданные предметы [28]. По результатам просвечивания решают вопрос о необходимости оперативного вмешательства [29,87, 114].

Частым нарушением работы желудочно-кишечного тракта у страусов могут быть постоянныезапоры, как правило, в результате неправильного кормления (у птенцов - обилие волокна в корме или отсутствие гравия для глотания), а также загрязнение корма мелким песком.

Неправильное кормление может вызватьпоносы, которые часто возникают при внезапной смене корма, например, у птенцов после перехода от сыпучего корма к гранулированному, а также у вновь прибывших птиц. Поносы особенно опасны для растущих птиц, поскольку они обезвоживают и ослабляют организм, нарушая развитие. Длительные поносы могут привести даже к смерти от истощения.

Серьезную угрозу представляют отравления, вызванные, в частности, передозировкой лекарств или непосредственным контактом птиц с находящимися на ферме токсичными веществами, например, с дезинфицирующими средствами. Кроме того отравление может вызвать передозировка кормовых антибиотиков в фураже [61]. Наличие среди зелёного корма петрушки (Petroselinum sativum) вызывает у страусов явление повышения фоточувствительности, сопровождающееся конъюнктивитом, слезотечением, поражением кожи головы и ушей [99].

Нарушения минерального состава кормов, а также нехватка в них витаминов группы В являются главной причинойсмещения ахиллова сухожилия, что вызывает искривление ног в таранных суставах и их широкую расстановку [113]. Недостаток витамина Е может вызывать энцефаломаляцию [35] и миопатию [88].

Наблюдаемое иногдавыпадение клоаки чаще всего возникает на фоне нарушений половой системы, слишком активной яйценоскости, гормональных нарушений и нарушений работы желудочно-кишечного тракта вследствие неправильного питания [74]. У птенцов выпадение клоаки связано с неправильным проведением сортировки птенцов по полу (многократное, сильное надавливание на клоаку).

Достаточно часто у птиц встречается птерофагия(выщипывание перьев). Это явление наблюдается главным образом у взрослых птиц от скуки, под действием стресс-факторов во время транспортировки или при переуплотнённости стада.

 

Часть II. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

 

Глава 1. Материалы и методы исследований

 

Исследования проведены в Лаборатории ветеринарной санитарии на государственной границе, транспорте и мясоперерабатывающих предприятиях ВНИИВСГЭ, а также на базе хозяйств “Лэмэк” Мытищинского района, страусофермы племзверосовхоза “Салтыковский” Балашихинского района и “Русский страус” Серпуховского района Московской области. Отдельные исследования, в частности, определение химического состава и микроструктурные исследования мышечной ткани проведены в Испытательном Центре ВНИИМП им. В. М. Горбатова, руководителю которого Кузнецовой Т.Г. выражаем искреннюю благодарность. Определение содержания холестерина проводилось в лаборатории обмена веществ и энергии Института Питания РАМН, сотрудника которой Кулакову С.Н. также благодарим за техническое содействие в выполнении исследований.

 

1.1 Предубойный ветеринарный осмотр и послеубойная экспертиза мяса страусов.

Исследования по проведению предубойного ветеринарного осмотра проводили на 80 головах африканского черношеего страуса в возрасте от 6 до 36 месяцев обоих полов, выращиваемых на страусофермах племзверосовхоза “Салтыковский” Балашихинского района и “Русский страус” Серпуховского района Московской области.

Предубойный осмотр осуществляли с учётом действующих “Правил ветеринарного осмотра убойных животных и ветеринарно-санитарной экспертизы мяса и мясных продуктов” (утверждёны ГУ ветеринарии МСХ СССР 27.12.83 с изменениями и дополнениями от 17.06.88) и анатомо-морфо-физиологических особенностей, характерных для страусов.

Термометрию проводили электронным термометром при фиксации птицы в специальном предложенном нами станке, частота дыхания определялась визуально. Специально отмечали изменения в поведении и внешнем виде птицы. Осмотр проводили последовательно, начиная с головы и заканчивая конечностями.

Послеубойную экспертизу туш и органов проводили на фермах племзверосовхоза “Салтыковский” и “Русский страус” с учётом анатомо-морфологических особенностей, характерных для страусов с проведением осмотра туши и органов в следующей последовательности: начинали с наружного осмотра туши, определяли правильность убоя, степень обескровливания, наличие патологических изменений на коже и в суставах. Далее осматривали голову и шею. Осмотр внутренних органов начинали с кишечника и брыжейки. Затем в процессе полного потрошения исследовали печень, яичник, семенники, желудок, селезенку, сердце, почки и легкие.

Всего были подвергнуты экспертизе туши и органы 20 голов страусов, продукты убоя которых были признаны пригодными для реализации без ограничений.

 

1.2 Определение свежести мяса страусов.

Изучение органолептических свойств мяса страуса проводили по следующим показателям: внешнее состояние туши, вид и цвет мышц на разрезе, определение консистенции и запаха мяса, состояния сухожилий, жира, определение прозрачности и аромата бульона с использованием ГОСТ 7269-79 “Мясо. Методы отбора образцов и органолептические методы определения свежести.”

Исследования физико-химических свойств мяса страуса проводили по следующим показателям: определение аммиака и солей аммония, пероксидазы, микроскопический анализ с использованием ГОСТ 7702.1-74 “Мясо птицы. Методы химического и микроскопического анализа свежести мяса.”

Определение содержание продуктов первичного распада белков в бульоне и определение количества летучих жирных кислот, проводили по ГОСТ 23392-78 “Мясо. Методы химического и микроскопического анализа свежести.”

Для определения рН использовали потенциометрический метод в соответствии с инструкцией к прибору “Ионометр универсальный ЭВ-74”.

Кроме того, при изучении органолептических и физико-химических показателей мяса страусов учитывали “Правила ветеринарного осмотра убойных животных и ветеринарно-санитарной экспертизы мяса и мясных продуктов” (1983), а также ВМУ “Ветеринарно-санитарный осмотр продуктов убоя животных” (2000).

Пробы мяса для исследования отбирали из группы мышц бедра африканских черношеих страусов, подвергнутых убою в племзверосовхозе “Салтыковский”. Всего исследовали 30 проб мяса (60 анализов) от 4-х голов птицы.

 

1.3 Исследование санитарно-микробиологических показателей мяса страусов.

Для исследования санитарно-микробиологических показателей мяса страусов использовали пробы свежего мяса и замороженного мяса в вакуумной упаковке после хранения в течение 6 месяцев. Исследования по определению КМАФАнМ проводили согласно ГОСТ 10444.15-94 “Продукты пищевые. Методы определения количества мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов.” Исследования по выделению БГКП и сальмонелл проводили соответственно по ГОСТ 30518-97 (ГОСТ Р 50474-93) “Продукты пищевые. Методы выявления и определения количества бактерий группы кишечных палочек (колиформных бактерий).” и ГОСТ 30519-97 (ГОСТ Р 50480-93) “Продукты пищевые. Методы выявления бактерий рода Salmonella.” Всего исследовано 6 проб (12 анализов) от трёх туш и 6 проб мяса, хранившегося при температуре -8°С.

 

1.4 Определение общего химического состава мяса страусов, содержания холестерина, витаминов и минеральных веществ.

Общий химический состав мяса определяли по следующим методикам: содержание влаги исследовали методом высушивания (ГОСТ 9793-74), количество жира определяли по методу Сокслета (ГОСТ 23042-85), определение содержания минеральных веществ проводили путём сжигания в фарфоровом тигле [13], количество белков определялось по Кьельдалю (ГОСТ 25011-81). Энергетическую ценность определяли из расчёта: 1 г белков = 4,0 ккал (16,7 кДж); 1 г жиров = 9,0 ккал (37,7 кДж) [13].

Определение общего холестерина проводили методом спектрофотометрического измерения интенсивности цветной реакции Либермана-Бурхарда [22].

Для определение витаминного состава использовали флуориметрический (для витаминов группы В) и колориметрический (для витамина РР) методы, описанные в Руководстве по методам анализа качества и безопасности пищевых продуктов (под ред. И.М. Скурихина и В.А. Тутельян).

Определение минерального состава проводили атомно-абсорбционным (для Na, Fe, K, Mg и Ca) и молибдено-ванадиевым методами (для Р), описанными в вышеназванном Руководстве [26] (Рис. 5).

Рис. 5. Атомно-абсорбционный анализатор "Спектр - 5"

 

Пробы мяса отбирали из группы мышц бедра африканских черношеих страусов, подвергнутых убою на страусофермах “Лэмэк”, племзверосовхоза “Салтыковский” и “Русский страус”. Всего исследовано 18 проб в 2-х кратной повторности (общее количество проведённых анализов - 36).

 

1.5 Микроструктурные исследования мышечной ткани страуса.

Для микроструктурных исследований образцы мяса фиксировали в 15 % водном растворе нейтрального формалина в течении 48 часов при комнатной температуре. После завершения фиксации образцы промывали в проточной воде, затем вырезали кусочки размером 10х5х5 мм.

Обезвоживание проводили в спиртах восходящей крепости (50, 70, 96 и абс), обезжиривание в смеси спирта и эфира в соотношении 1:1.

Образцы пропитывали расстворами целлоидина в течение 14 суток и наклеивали на деревянные кубики. Срезы толщиной 7-9 мкм изготавливали на санном микротоме, окрашивали гематоксилином Эрлиха с последующей докраской 1 % водным раствором эозина. Исследование проводили с помощью светового микроскопа “Иеновал” (Германия) при увеличении 320 раз. Исследовали пробы мышечной ткани из группы мышц голени страуса (m. gastrocnemius).

 

1.6 Определение аминокислотного и жирнокислотного состава мяса страусов.

Определение аминокислотного состава осуществляли после гидролиза проб, по методике Мура и Штейна [26], с определением аминокислот на автоматическом аминокислотном анализаторе LC 3000 фирмы “Eppendorf - Biotronik” (Германия) (Рис. 6).

Рис. 6. Автоматический аминокислотный анализатор LC 3000 фирмы "Eppendorf-Biotronik" (Германия)

 

Выделение липидов из образцов осуществляли экстракцией по методу Фолча [26]. Чистоту выделенных липидов проверяли методом тонкослойной хроматографии. Определение состава жирных кислот проводили на газовом хроматографе (Рис. 7) НР 6890 фирмы “Hewlett Packard” (США). Пробы мяса отбирали из группы мышц бедра африканских черношеих страусов, подвергнутых убою на страусофермах “Лэмэк”, Салтыковского племзверосовхоза и “Русский страус”. Всего исследовано 33 пробы в 2-х кратной повторности (общее количество проведённых анализов - 66).

Рис. 7. Газовый хроматограф НР 6890 фирмы "Hewlett Packard" (США)

 

1.7 Определение относительной биологической ценности (ОБЦ) мяса страусов.

Определение относительной биологической ценности (ОБЦ) проводили с использованием в качестве тест-культуры реснитчатых инфузорий Тетрахимена пириформис (штамм WH14) согласно “Методическим рекомендациям для использования экспресс-метода биологической оценки продуктов и кормов [5]. Материалом для исследования служило свежемороженое мясо (бедренная группа мышц) африканского черношеего страуса в сравнении с мясом индейки и курицы.

 

Цифровой материал обработан методом вариационной статистики с вычислением средней арифметической величины (М) [25].

 

 

РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

 

Глава 2. Ветеринарно-санитарные рекомендации по строительству и эксплуатации ферм для содержания страусов и ветеринарные требования к убойным пунктам и площадкам

 

2.1 Ветеринарно-санитарные рекомендации по строительству и эксплуатации ферм для содержания страусов.

В Московской области существует несколько страусоводческих ферм, которые разводят страусов в племенных целях и выращивают их на мя­со. Для содержания птицу на них используются как специально построенные помещения из дерева, так и приспособленные бетонные ко­ровники и телятники. При подготовке ветеринарно-технических требований к строительству и эксплуатации ферм для содержания страусов проводили изучение условий содержания птицы в различных хозяйствах, в частности “Лэмэк” Мытищинского района, страусофермы племзверосовхоза “Салтыковский” Балашихинского района и хозяйства “Русский страус” Серпуховского района Московской области, что позволило подготовить указанные ветеринарно-технические требования.

Страусиные фермы желательно располагать в регионах, где погод­ные и климатические условия позволяют птице большую часть времени находиться вне помещений. Фермы должны распологаться на хорошо ос­вещённой солнцем площадке с низким уровнем грунтовых вод и хоро­шим дренажем. Желателен небольшой уклон южной экспозиции и лёгкий тип почвы с плотным травяным покровом.

Ограждение фермы должно препятствовать уходу страусов за ее территорию, быть безопасным для птицы и обслуживающего персонала, а также препятствовать проникновению на ферму извне посторонних людей и хищников. Металлическая сетка, используемая при ограждении не должна иметь ячейку более 55х55 мм, чтобы страус не мог просунуть в неё голову, что грозит повреждением шейных позвонков.

Ферма должна быть разделена на технологические зоны, в частности зоны для содержания родительского стада, ремонтного молодняка, птиц товарного стада. Также предусматривается сооружение инкубатория, ветеринарного и убойного пункта, кормосклада и кормокухни. Следует специально выделить помещение - изолятор - для больных птиц или чувствующих недомогание, что в особенности касается птенцов в период выращивания.

Здания и сооружения фермы должны быть сухими, с хорошей вентиляцией при отсутствии сквозняков. В них должно быть предусмот­рено естественное и искусственное освещение (10-12 часов в день), а в помещениях для молодняка - отопление, полы в помещениях должны быть сухими, нескользкими, с малой теплопроводностью и легко под­вергаться очистке, для птенцов можно предусматривать двойной пол. Птицы, доставленные на ферму, должны обязательно пройти карантин, лучше за пределами территории фермы, в течение срока не менее 4 недель.

Подстилка должна быть сухой и чистой. Птенцам младшего возраста для подстилки используется только песок, во избежания возникновения непроходимости в желудке при применении стружек или соломы.

Загоны и выгулы должны быть максимально просторными, чтобы обеспечить каждой птице свободу перемещения при агрессии со сторо­ны других птиц (Рис. 8). Между группами птиц родительского стада следует преду­сматривать надёжный барьер, в т.ч. визуальный, во избежание возник­новения конфликтных ситуаций, приводящих к стрессу. Загоны должны иметь форму вытянутого прямоугольника, при этом внутренние углы должны быть сглажены, во избежании попадания туда птиц и причинения им повреждений. В загонах следует предусматривать укрытия от солнца и дождя, а также зольно-песочные ванны для гигиены пера птицы.

Рис. 8. Страусы в загонах летом (вверху) и зимой

 

Примерные минимальные нормативы площадей, введённые в странах ЕС (1997 г.) нами были изучены на примере ряда хозяйств (“Лэмэк” Мытищинского района, страусофермы племзверосовхоза “Салтыковский” Балашихинского района и “Русский страус” Серпуховского района Московской области) с целью их адаптации и признаны приемлемыми для содержания страусов в условиях РФ.

Нормы площадей, рекомендуемые для содержания страусов различного возраста приведены в таблице 2.

Таблица 2

 

Минимальные площади для содержания страусов

 

Возраст

Максимальное количество

Здания и сооружения

Загоны и выгулы

 

птиц в группе

м2/голову

всего м2

 

м2/голову

всего м2

 

до 4 дней

40

0,25

1

10

100

от 4 дней до 3 нед.

40

0,25-1,2

5

10

100

от 3 нед. до 6 мес.

40

2-10

15

10-40

100-1000*

6-12 мес.

-

10

30

800/3

1000*

Птицы первого года размножения

 

-

 

10

 

30

 

1000/3

 

1000**

Взрослое родительское стадо

 

-

 

10

 

30

 

2000***

 

1000**

 

Примечание:

* - короткая сторона не менее 10 м, длинная - минимум 50 м;

** - короткая сторона не менее 10 м, длинная - минимум 100 м;

*** - на каждую дополнительную самку необходимо добавлять не менее 200 м2выгула, на каждого дополнительного самца - не менее 800 м2;

“-“ - не нормируется

 

2.2 Ветеринарные требования к убойным пунктам и площадкам.

В настоящее время в РФ не существует специализированных линий по убою страусов. При необходимости осуществить убой большого их количества можно использовать существующие убойные цеха мясоперерабатывающих предприятий с необходимой доукомплектацией в соответствии со спецификой убоя и разделки страусов.

Ветеринарные требования к убойным пунктам и площадкам для первичной переработки страусов согласуются с общеизвестными правилами для предприятий по убою и переработке птицы, но вместе с тем требуется их официальное описание применительно к цехам убоя страусов.

Стены производственных отделений (цехов) делают из водонепроницаемых материалов гладкими, полы устраивают с уклоном 1- 2° в сторону стоков, которые легко можно мыть и дезинфицировать. Стены, потолки и оборудование красят алкидной краской. Запрещено применять свинцовые белила, сурик, краски с кадмием и сурьмой. Для защиты от грызунов в стены закладывают стальную сетку с мелкими ячейками на высоту 0,5 м от уровня цоколя и на 5 см ниже пола. Крышки столов покрывают нержавеющим металлом, бетоном или мрамором (с разрешения саннадзора - пластиком). Кроме того, пункт должен быть оснащён 1-2 лебёдками. Одна должна быть закреплена на потолке, другая - переносная - для закрепления на потолке и стене.

Оборудование, соприкасающееся с мясопродуктами, делают из нержавеющей стали или покрывают его специальным лаком. Помещения должны быть хорошо освещены. Для предупреждения попадания прямых солнечных лучей на мясопродукты окна оборудуют защитными устройствами (козырьки, жалюзи и др.).

У входа в убойно-разделочное отделение помещают дезковрик из опилок, около водопроводного крана - емкость с дезинфицирующим раствором для дезинфекции рук, инструментов, резиновых перчаток, сапог и др. Убойные пункты должны быть обеспечены в достаточном количестве водой в соответствии с требованием ГОСТ 2874-82 “Вода питьевая.”

В производственном отделении обязательно оборудуют места для проведения осмотра голов, внутренних органов и туш и их клеймения.

Для переработки отходов производства и ветеринарных конфискатов в отдельном помещении устанавливают пароварочный котел для выработки вареных кормов и технического жира. При производстве кормов должны быть обязательны гарантия обеззараживания отходов, изоляция от готовой продукции и строгое выполнение ветеринарно-санитарных правил.

В холодильнике оборудуют изолированную камеру для хранения мяса, полученного от больных животных, санитарную оценку которому дают после проведения бактериологического исследования.

При нерегулярном убое 1-5 голов в смену целесообразно оборудовать крытую убойную площадку (Рис. 9) площадью 10-15 м2, обеспечивающую обработку туши в вертикальном положении. Такая площадка должна состоять из станка для убоя, лебёдки, рабочих столов для разделки, обвалки и осмотра органов, тары для сбора крови, пера, кожи, жира, внутренних органов, костей и мяса.

Субпродукты, полученные от птицы, обрабатывают на отдельном столе в стороне от мяса. Для сбора кишечников, желудков, забракованных частей туши и субпродуктов устраивают герметичные ящики с закрывающейся крышкой.

Убойная площадка должна быть обеспечена водой (зимой - тёплой) и соответствующим инструментарием - топоры, пилы, ножи, крючья, муссаты и пр.

 

Глава 3. Предубойный ветеринарный осмотр и послеубойная

ветеринарно-санитарная экспертиза туш и органов страусов

 

3.1 Проведение предубойного ветеринарного осмотра страусов.

Предназначенную к убою птицу переводили в отдельный загон для предубойной выдержки без корма, но обязательно обеспечивали водой. Продолжительность просидки должна составлять 10-12 часов.

При подозрении на заболевание птицу отгоняли в отдельный загон, где фиксировали и измеряли температуру. Для этого использовали электронный термометр моментального действия. Температура тела здорового страуса колеблется от 37,7° до 40 °С (обычно около 39 °С). Частота дыхания 6-12 раз в минуту, что определяют визуально. Все манипуляции со страусами проводили в спокойной манере, чтобы избежать пагубного влияния возникающего стресса на качественные показатели мяса.

Чтобы облегчить работу по подготовке птицы к убою, на их головы одевали тёмный капюшон с отверстием для клюва, позволяющем дышать. В этом случае птица лишена возможности зрительного контакта с окружающей средой и ведёт себя более спокойно. Ниже приведена таблица с основными клиническими признаками здоровых страусов и с признаками птицы, подозрительной по заболеванию (Таблица 3).

Таблица 3

 

Основные клинические признаки здоровых и подозрительных по заболеванию страусов

Характерные признаки здоровой птицы

Характерные признаки больной птицы

- быстрая реакция на раздражители, подвижность, активность, любопытство, зачастую агрессия (у самцов);

- шею держит прямо, голову высоко, постоянно осматривается; - глаза блестящие, роговица глаз чистая;

- движения при ходьбе чёткие, упругие;

- линии шеи, крыльев и ног чёткие и симметричные;

- тело округлой формы, без признаков истощения;

- перо блестящее, оперение полное;

- оперение вокруг клоаки чистое;

- истечений из носа и глаз нет;

- видимые слизистые оболочки бледно-розовые;

- дыхание ровное, частота зависит от температуры окружающей среды и от активности птицы;

- большую часть времени проводит в составе группы птиц;

- моча прозрачная и водянистая, или густая, слизистая;

- помёт тёмный, плотный;

- держится отдельно от группы, часто в углу загона;

- находится в состоянии угнетения и безразличия;

- ухудшение или отсутствие аппетита, отсутствие клевательных движений;

- глаза полузакрыты;

- шея постоянно занимает положение отличное от вертикального (кроме кормёжки), может быть искривлена, голова опущена или лежит на спине, хвост и крылья опущены;

- реакция на раздражители вялая, движения нескоординированные;

- асимметрия ног, крыльев, наклон тела в сторону, линия спины заострённая;

- дыхание нерегулярное, прерывистое;

- моча зеленоватого или коричневатого цвета;

- помёт тестообразный или жидкий, обесцвеченный, с примесями слизи или крови или отсутствует вообще;

- вышеперечисленные признаки могут проявляться по отдельности или несколько одновременно;

 

Визуальный ветеринарный осмотр страуса, предназначенного на убой, начинали с осмотра общего вида птицы, затем последовательно осматривали голову, шею, корпус и конечности. На голове осматривали состояние слизистой оболочки глаз и роговицу. Также обращали внимание на отсутствие выделений из носовых отверстий, клюва, осматривали слуховое отверстие. При осмотре шеи обращали внимание на её положение и отсутствие ран, припухлостей и вздутий. Корпус птицы осматривали, поднимая крылья. Исследовали состояние перьев, кожного покрова. Конечности осматривали в движении. Обращали внимание на походку, искривление костей, раны. Чаще всего у страусов отмечали травматические повреждения конечностей и их искривление вследствие неправильного выращивания, а также частичную утрату оперения вследствие птерофагии. Страус с подозрением на заболевание изображён на рис. 10.

Рис. 10. Страус с подозрением на заболевание

 

При выявлении указанных в таблице показателей клинически больной птицы ветеринарный специалист должен принимать срочные меры, т.е. в каких случаях больной птице оказывать лечебную помощь, а в каких - направлять на вынужденный убой.

В первую очередь на убой направляется здоровая птица. Птица, имеющая отличные от здоровой клинические признаки подвергается убою и разделывается в отдельном помещении или в общем зале, но после здоровой птицы.

 

3.2 Ветеринарно-санитарный контроль технологии убоя и переработки страусов.

Предложенная ВНИИПП (Гущин В.В., 2002) “Технологическая инструкция по производству мяса страуса” регламентирует выработку мяса страусов без включения в технологический процесс ветеринарного контроля. Нами даётся подробное описание ветеринарного контроля по ходу технологического процесса с описанием состояния внутренних органов в норме, что должно учитываться при проведении ветеринарно-санитарной экспертизы.

Обычно для убоя страусов принято использовать электрическое оглушение или обезглавливание. Также существует методика оглушения птицы с использованием пневматического пистолета с подвижной полой иглой. В этом случае при проникновении иглы в череп птицы происходит дозированное введение воздуха, предотвращающего посмертные конвульсии. При оглушении электротоком для повышения электропроводимости голову страуса увлажняют водой или солевым раствором.

Для оглушения используют специальные щипцы, желательно с острыми концами. Значения напряжения и силы тока, а также время экспозиции выбирают, исходя из имеющихся технических возможностей. Эти значения, приведённые различными авторами [79, 85], даны в таблице 4.

Следует предпочесть параметры с большой силой тока и низким напряжением, как наиболее эффективно обездвиживающие птицу.

Таблица 4

 

Примерные технические параметры оборудования для оглушения страусов

Напряжение

Сила тока

Экспозиция

52V

0,1-0,3 А

10-12 с

90 V

1 А

3 с

175 V

0,33-0,73 А

4-8 с

200 V

0,47-0,63 А

6 с

235 V

0,5 А

6 с

 

Для убоя страусов поодиночке заводят на боенскую площадку, где оглушают. Оглушение не должно вызывать смерть страуса, в противном случае это приведет к плохому обескровливанию, кровоизлияниям в органах и тканях. Неудовлетворительное обескровливание бывает также при убое утомленных и больных птиц. Правильно оглушённая птица сохраняет сердцебиение и дыхание до начала процесса обескровливания. Птица, убитая при оглушении электротоком, в пищу людям не должна допускаться. В этом случае смерть страуса должен фиксировать ветврач специальным актом.

В наших исследованиях в связи с отсутствием оборудования для электрооглушения, убой проводили путём обезглавливания. Голову отсекали сразу за атлантом или через 1-2 позвонка. Непосредственно во время убоя соблюдали большую осторожность, т.к. при продолжающейся несколько минут агонии птица способна нанести травмы персоналу.

При проведении убоя путём обезглавливания, удобно использовать специальный станок, разработанный на основе станка для фиксации страусов представляющий собой раскол с высокими перилами и плахой, на которой производится отсекание головы (Рис. 11). Станок рекомендован для применения на ферме “Русский страус”.

Рис. 11. Станок для убоя страусов гильотинированием

 

Станок имеет устойчивое основание и изготавливается из материалов, легко поддающихся мойке и дезинфекции (желательно - нержавеющая сталь). Птицу фиксировали в станке сзади поперечиной, сверху - ремнями, ноги закрепляли цепями к продольным брусьям станка, а шея фиксировалась на плахе ремнём, после чего все манипуляции с птицей упрощаются. После отсечения головы птица за цепи на ногах извлекалась из станка лебёдкой.

Обескровливание проводили перерезая ножом дугу аорты, для чего нож вводили в туловище внизу основания шеи, параллельно позвоночнику на глубину 10-15 см и совершали несколько горизонтальных движений, рассекая сосуды.

При убое обезглавливанием, одевали на шею со стороны удалённой головы прочный полиэтиленовый пакет и надёжно его фиксировали. Это предотвращает загрязнение места разделки кровью. На специализированных мясоперерабатывающих предприятиях эту процедуру можно не проводить. Обескровливание должно продолжаться до 30 минут.

Обескровливание и последующую обработку туш проводили в вертикальном положении. В санитарном отношении вертикальный способ обработки лучше, чем горизонтальный (напольный) т.к. позволяет получать мясо более высокого санитарного качества. Для этого у туши удаляли плюсневые кости (цевки) по суставу, на дистальной части берцовой кости снимали кожу на 7-10 см, чтобы шпагатом или цепями завязав петлёй вокруг мыщелка, поднять тушу на удобную для последующих операций высоту.

Следующая операция - удаление пера. Ощипывание лучше проводить сухим способом (без ошпаривания), вручную или механически, используя специальные приспособления.

После удаления пера, производили снятие кожи. Начинали снимать кожу, проведя продольный разрез от сращения лонных костей до грудной мозоли (Рис. 12). Мозоль удаляли. Вокруг хвоста и области клоаки делали круговой разрез, разъединяя хвостовые позвонки, затем разрез углубляли, аккуратно отсекая жировую ткань вокруг клоаки и прямой кишки. Хвост с клоакой подтягивали вверх, шпагатом перевязывали прямую кишку у основания клоаки, затем погружали вместе с хвостом обратно в образовавшееся отверстие.

Рис. 12. Туша страуса после ощипки пера

 

Продолжая снятие кожи, делали разрезы по внутренней стороне бедра до соединения с продольным разрезом на животе (Рис. 13). Также проводили разрезы вдоль шеи и крыльев, соединяя их на месте удалённой грудной мозоли. Кожу снимали подрезая подкожную фасцию ножом с закруглённым концом, не допуская сквозных разрезов кожи, а также прирези подкожного жира и мышечной ткани. На конечном этапе удобно снимать кожу, закрепив свободную её часть на лебёдке, прикреплённой к стене и создав натяжение.

Рис. 13. Туша страуса - начало процесса снятия кожи

 

При снятии кожи с туши не допускают порезов мышечной ткани, срывов подкожного жира, прирезей мяса, загрязнения туши. Кожный покров животных, перерабатываемых на мясо, должен быть чистым. Снимаемая кожа не должна соприкасаться с мясом туши.

После снятия кожи с туши полностью удаляется подкожный жир (Рис. 14).

Рис. 14. После снятия подкожного жира приступают к проведению нутровки

 

Разделку туши страуса организовывали таким образом, чтобы до окончания ветеринарно-санитарной экспертизы туши голова, внутренние органы и другие продукты убоя не были обезличены (нумерация туши и внутренних органов одним номером).

Нутровку осуществляли следующим образом. От лонного сращения (разделяя его) к грудной кости делали продольный разрез мышц, жировой ткани и серозной оболочки. Разрез делается избегая случайного касания кишечника. Пласты внутреннего жира с мышцами и серозной оболочкой удаляли с обеих сторон разреза. Грудина распиливалась в продолжение разреза. В разрез грудины удобно вставить расширяющее устройство, но можно обойтись и без него.

Удаляли шею в месте визуального соединения с туловищем.

При наличии второй лебёдки, закреплённой на потолке, туша подвязывается за крылья, с которых предварительно удаляется запястно-пястная (III-я) кость и принимает вертикальное положение, удобное для нутровки.

Через разрез грудины извлекали печень в связке с сердцем и отправляли на экспертизу. Начиная с грудной части пищевода, удаляли пищеварительный тракт (у самок в связке с половой системой) с селезёнкой, путём оттягивания его вниз, освобождая, попутно, от связок. Затем удаляли лёгкие, семенники (у самцов) и почки (Рис. 15).

Рис. 15. Вид туши страуса после нутровки

 

Особое внимание следует обратить на то, чтобы кишечник был удалён из туши возможно скорее и не позднее двух часов после убоя. Это положение требует особого внимания, так как ощипывание туши и снятие кожи у неопытного персонала занимают значительное количество времени.

Окончательная разделка завершается разделением на две полутуши, путём продольного разреза позвоночного столба.

Для придания туше (полутуше) надлежащего товарного вида проводили санитарную и технологическую зачистку. Сначала удаляли ножом возможные участки побитостей, загрязнений, остатки внутренних органов, абсцессы, кровоподтеки, затем поверхность туши при необходимости подвергали душированию водой.

Получаемые туши направляли для охлаждения в камеру с низкой температурой (0+4° С), обычно в течение суток, после чего направляли на реализацию (после соответствующей предпродажной подготовки) или на хранение в холодильник.

В холодильнике должна быть оборудована камера для хранения мяса, полученного от больной птицы, санитарную оценку которому дают после проведения дополнительной экспертизы и при необходимости бактериологического исследования.

В производственных помещениях по окончании работы проводят обязательную влажную уборку и текущую дезинфекцию.

 

3.3 Послеубойная ветеринарно-санитарная экспертиза туш и органов страусов.

Послеубойный осмотр продуктов убоя страуса имеет особенности, связанные с анатомическим строением птицы.

Исследование туш и органов проводили в следующем порядке: начинали с наружного осмотра туши, определяли правильность убоя, степень обескровливания, наличие патологических изменений на коже и в суставах, затем проводили ветсанэкспертизу внутренних органов.

Кожа здорового страуса белого или бело-серого цвета. Красный цвет кожи и наполненные кровеносные сосуды, иногда видимые через кожу, особенно под крыльями, на груди и в пахах, указывают на плохое обескровливание. При этом на месте зареза обычно вытекает кровь или кровянистая жидкость. Недостаточное обескровливание может быть следствием стресса, испытанного птицей при поимке и проведении убоя. Плохо обескровленные туши получают от птиц, убитых в состоянии агонии или убитых электротоком при оглушении.

При осмотре головы и шеи обращали внимание на состояние клюва, ротовой полости и глаз.

На коже головы и шеи выявляли наличие возможных поражений. При осмотре клюва обращали внимание на цвет, глянцевитость, сухость, упругость. В ротовой полости определяли состояние слизистой оболочки рта, языка, области зева и глотки (цвет, запах, слизь, узелки, пленки, казеозные пробки). При осмотре глаз обращали внимание на состояние роговицы; прозрачность, выпуклость, впалость, размеры глазного яблока, наличие слизи. Вскрывали и осматривали пищевод и трахею.

При наружном осмотре головы и шеи обращали внимание также на возможное наличие признаков, характерных для оспы, парши и других инфекционных и иных болезней.

Осмотр внутренних органов начинали с кишечника и брыжейки. Затем в процессе полного потрошения исследовали печень, яичник, семенники, желудок, селезенку, сердце, почки, легкие и воздухоносные мешки.

При осмотре внутренних органов на брыжейке и в кишечнике определяли возможное наличие кровоизлияний, воспалительных явлений, фибрина, гельминтов, изъязвлений и других поражений.

При осмотре сердца обращали внимание на состояние перикарда, его цвет, наличие кровоизлияний, жидкости (ее количество, прозрачность), после чего осматривают эпикард. Затем делали разрез сердечной мышцы через все полости, обнажая эндокард. Осматривали сердечные клапаны. При осмотре сердечной мышцы обращали внимание на наличие кровоизлияний, узелков и консистенцию (плотная, дряблая). У страусов в норме сердце каплевидной формы, частично или полностью покрыто жиром. В сердечной сумке незначительное количество прозрачной жидкости. Миокард плотный, вишнёво-красного цвета, сосудистый рисунок слабо выражен.

Печень осматривали с диафрагмальной и висцеральной сторон. Определяли цвет, величину, консистенцию, наличие узелков, очагов некроза, кровоизлияний, характер разреза. Печень страуса равномерно тёмно-коричневого цвета, упругая, края острые. На разрезе выражен рисунок гепатоцитов. Желчный пузырь отсутствует.

Селезёнку осматривали снаружи, определяли размер, цвет, упругость. Делали продольный разрез и оценивали цвет и консистенцию пульпы. Селезёнка красно-фиолетового цвета в форме фасоли, длиной 5-8 см, упругой консистенции. На разрезе выражен структурный рисунок.

В мышечном и железистом желудке определяли наличие кровоизлияний (особенно на их границе), изъязвлений, характер содержимого.

При осмотре грудобрюшной полости исследовали состояние серозных оболочек, легких, воздухоносных мешков, почек и семенников. Определяли цвет, наличие кровоизлияний, экссудатов, отложений фибрина; состояние легких и почек (цвет, величину, консистенцию, наличие узелков и других изменений). Почки страуса представляют собой две продолговатых пластины светло-коричневого цвета, длиной 20-35 см, толщиной 1,5-2 см и шириной до 5 см, располагающиеся в собственных углублениях вдоль позвоночного столба. На поверхности почек чёткий рисунок.

Таким образом, о ветеринарно-санитарном благополучии туши судили по результатам комплексного послеубойного ветеринарного осмотра.

 

Глава 4. Определение органолептических и физико-химических показателей мяса страусов

 

4.1 Органолептические показатели свежести мяса.

Как известно, мясо относят к скоропортящимся продуктам питания. В процессе хранения оно может подвергаться различным изменениям. Эти изменения возникают под действием собственных ферментов мяса или в процессе жизнедеятельности микроорганизмов. Мясо страуса, потребляемое в России может иметь как импортное, так и отечественное происхождение. Соответственно из-за рубежа поступает мясо глубокой заморозки, а внутри страны возможен оборот мяса как в охлаждённом, так и в замороженном состоянии.

При убое страусов получали мясо, по вкусу и текстуре напоминающее телятину или говядину (в зависимости от возраста). Цвет мяса в туше страуса равномерно красный. Отмечали незначительные изменения цвета в сторону более тёмного оттенка красного цвета, характерного для глубоколежащих мышц.

Для определения свежести отбирали 200 г мяса с нижней части окорока страуса или 150 г из верхней части окорока и от фасованного мяса. Органолептические исследования проводили при естественном освещении и комнатной температуре. По результатам исследования делали заключение о степени свежести мяса или субпродуктов согласно данным таблицы 5, которые разработаны нами для 3-х категорий свежести и рекомендуются при проведении определения свежести мяса в практических условиях.

Таким образом, по органолептическим признакам туши (мясо) страусов, отнесённые к категории свежих, должны выпускаться для реализации без ограничения. В случае необходимости, мясо страусов, отнесённое по органолептической оценке к мясу сомнительной свежести, подвергают химическим и микроскопическим исследованиям. В спорных случаях необходимо проводить гистологический анализ мышечной ткани (ГОСТ 23481-79 “Мясо птицы. Метод гистологического анализа.”).

Таблица 5

 

Органолептические показатели мяса африканских страусов различной свежести

 

Характерные признаки мяса

Показатель

Свежего

Сомнительной

свежести

Несвежего

Внешнее состояние туши

Корочка подсыхания бледно-розовая, почти прозрачная, прочная

Местами увлажнённая, липкая, поверхность туши потемневшая

Туша скользкая, покрыта слизью или плесенью

Мышцы на разрезе

Тёмно-красные слегка влажные, не оставляющие влажного пятна на фильтровальной бумаге

Влажные, оставляющие влажное пятно на фильтровальной бумаге, слегка липкие

Влажные, липкие, на фильтровальной бумаге оставляют заметный отпечаток с частицами мышечной ткани

Консистенция

Мясо упругое, легко режется; образующаяся при надавливании ямка быстро выравнивается

Мясо менее упругое; образующаяся при надавливании ямка выравнивается не до конца

Мясо дряблое, волокна размягчены и плохо режутся; образующаяся при надавливании ямка не выравнивается

Запах мяса

Специфический, свойственный свежему мясу, без постороннего запаха

Слабый запах с кислым или гнилостным запахом

Сильный неприятный гнилостный запах

Серозная оболочка грудобрюшной полости

Сухая, блестящая, без слизи и плесени

Матовая с влажным блеском

Ослизнена, возможно наличие плесени

Состояние сухожилий

Упругие, плотные, блестящие, прочные, ярко-белого цвета; поверхность суставов ярко-белая, чистая, блестящая

Матово-белого цвета; суставные поверхности матово-белого цвета, слегка ослизнены

Дряблые, сероватые, суставные поверхности сероватые, покрыты слизью

Цвет жира

Белый с желтоватым оттенком

С желтовато-сероватым оттенком и слабым запахом прогоркания

Жир местами дряблый, с сильным запахом прогоркания, затхлости, приобретает тёмно-серый цвет, поверхность липкая

Проба варкой (вкус и запах бульона и мяса)

Бульон прозрачный, ароматный, с характерным запахом; мясо бледно-серого цвета со вкусом телятины

Прозрачный или мутный, с несвойственным бульону запахом, мясо серого цвета со слабым посторонним запахом

Бульон мутный с характерным неприятным запахом, мясо тёмно-серого цвета с посторонним запахом

 

Туши (мясо) сомнительной свежести после соответствующих анализов и зачистки (удаление липких, изменённых участков) необходимо направлять на проварку кусками, массой не более 2 кг и толщиной до 8 см в открытых котлах в течение 3-х часов или использовать на варёные колбасы, которые варят при температуре + 88-90° С в течение времени по достижению температуры внутри батона не ниже 75° С (п.п. 11.3.1 и 11.5.1. “Правил ветеринарного осмотра убойных животных и ветеринарно-санитарной экспертизы мяса и мясных продуктов”).

Туши (мясо) несвежие следует направлять на техническую утилизацию.

Жир сомнительной свежести может перетапливаться с последующим использованием. Испорченный жир утилизируют.

 

4.2 Физико-химические показатели свежести мяса страусов.

В случае разногласий в оценке свежести мяса, его следует подвергать химическому и микроскопическому анализу. Мясо страуса исследовали с определением показателей рН, продуктов первичного распада белков в бульоне (реакция с сернокислой медью), количества летучих жирных кислот, проводили микроскопию мазков-отпечатков, окрашенных по Грамму (Таблица 6). Показатели рН свежего, сомнительной свежести и несвежего мяса страуса приведены в таблице 6.

Показатели рН мяса здоровых страусов в процессе созревания выглядели следующим образом: через 30 мин после убоя - 6,3; через 2 часа - 6,2; через 4 часа - 5,9; через 6 часов - 5,9 и через 24 часа - 5,8.

Применяемые для исследования мяса домашней птицы реакция на пероксидазу и амино-аммиачный азот неприемлемы для мяса страусов из-за их нечитаемости в силу окрашивания мясной вытяжки в насыщенный красный цвет (окрашивание миоглобином мышечной ткани).

Таблица 6

 

Физико-химические показатели свежести мяса страусов

№ п/п

Показатели

Мясо африканского страуса

 

 

Свежее созревшее

Подозрительной свежести

Несвежее

1

рН

5,8 - 6,0

6,3 - 6,4

> 6,5

2

Определение продуктов первичного распада белков в бульоне (реакция с сернокислой медью)

 

Бульон прозрачен

 

Помутнение бульона

Хлопья, в отдельных случаях образование желеобразного осадка

3

Определение количества летучих жирных кислот (мг КОН в 25 г мяса)

 

 

4,0

 

 

4,1 - 7,0

 

 

> 7,0

4

Микроскопия мазков-отпечатков

Распада мышечной ткани нет, микрофлоры в поле зрения мазков не отмечается

Следы распада мышечной ткани, в поле зрения мазков до 20 микро-организмов

Значительный распад мышечной ткани, исчезновение исчерченности мышечных волокон, в поле зрения мазков > 30 микро-организмов

 

Глава 5. Санитарно-микробиологический контроль мяса страусов.

 

Мясо страусов в процессе убоя, разделки и хранения может быть обсеменено микроорганизмами, что требует проведения санитарно-микробиологических исследований. В этом случае руководствуются требованиями СанПиН 2.3.2.1078-01 и“Правилами ветеринарного осмотра убойных животных и ветеринарно-санитарной экспертизы мяса и мясных продуктов” (утверждёнными ГУ ветеринарии МСХ СССР 27.12.83 с изменениями и дополнениями от 17.06.88)

 

5.1 Исследования по определению КМАФАнМ.

Определение количества мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов в мясе страуса показало, что и в мясе после убоя и в замороженном в вакуумной упаковке, хранившемся 6 месяцев оно на несколько порядков ниже максимально допустимого значения.

 

5.2 Исследования по выделению БГКП.

Исследования проводили с целью определения санитарных условий при убое и разделке мяса страуса. При исследовании бактерий группы кишечной палочки в образцах полученных после убоя и замороженного в вакуумной упаковке, хранившегося 6 месяцев мяса страуса обнаружено не было.

 

5.3 Исследования по выделению сальмонелл.

Исследования проводились с целью выяснения пищевой безопасности мяса после убоя и замороженного в вакуумной упаковке, хранившегося 6 месяцев мяса страуса. В результате исследований сальмонелл в образцах мяса последние не были обнаружены.

Результаты исследований представлены в таблице 7.

Таблица 7

 

Санитарно-микробиологическое исследование мяса страусов (М)

 

 

Показатели

 

Норма по СанПиН

 

Мясо охлаждённое

Мясо заморо-женное в ва- куумной упак;

 

охлаж/замор

из группы м-ц бедра

из группы м-ц голени

(срок хран. 6 мес.)

КМАФАнМ (КОЕ/г)

1х104 / 1х105

1,5 х 101

2,0 х 101

1,0 х 101

БГКП (колиформы)

исследовано в 1г

-

-

-

Сальмо-неллы

не допускаются в 25 г

 

-

 

-

 

-

 

Примечание: “-“ - не обнаружено

Таким образом, используя вышеперечисленные методы, можно абсолютно точно установить свежесть мяса страуса и на основании этого принимать решение о его дальнейшем использовании. При высоком технологическом и санитарном уровне убоя и разделки мяса, оно полностью соответствует имеющимся санитарным нормам, как после убоя, так и после длительного хранения.

 

Глава 6. Изучение качественных показателей мяса страусов

 

6.1 Общий химический состав мяса.

Мясо страусов имеет сложный химический состав. В нём содержатся белки, жиры, минеральные вещества, витамины и др. Для сравнения с мясом крупного рогатого скота и индейкой, полученные нами данные состава мяса страусов представлены в таблице 8.

Таблица 8

 

Общий химический состав мяса африканского страуса (М)

 

Показатели

Наимено-вание образца

Влага, %

Жир, %

Белок, %

Зола, %

Холестерин, мг/100г

Энергетическая ценность на 100 г мяса,

ккал* кДж

 

Мясо страуса (ферма “Лэмэк”)

 

74,5

 

2,3

 

19,2

 

1,3

 

-

 

97,5

 

407,3

Мясо страуса (ферма “Русский страус")

 

 

76,6

 

 

1,1

 

 

20,7

 

 

1,1

 

 

65

 

 

92,1

 

 

387,1

Говядина (справочные данные)

 

72,4

 

6,4

 

20,2

 

1,0

 

63-65

 

138,0

 

577,3

Мясо индейки (II кат) (справочнданные)

 

 

64,5

 

 

12,0

 

 

21,6

 

 

1,1

 

 

64-90

 

 

197,0

 

 

842,2

 

Примечание: * - 1ккал = 4,184 кДж

“-“ - не исследовалось

 

Как можно видеть из таблицы, мясо страусов по содержанию влаги, белка и золы практически не отличается от мяса сельскохозяйственной птицы. Обращает на себя внимание, что содержание жира в мясе страусов почти в два раза ниже в сравнении с говядиной и в 6 раз в сравнении с мясом индейки.

Этим, по-видимому, можно объяснить низкую энергетическую ценность мяса страусов в сравнении с говядиной и мясом индейки (в 1,5-2 раза).

Кроме того, мясо страусов по соотношению количества белка к энергетической ценности является высокоценным пищевым продуктом, незначительно уступая белку куриного яйца (соответственно 22,6 г/100 ккал и 23,0 г/100 ккал) т.е. может использоваться при необходимости наиболее эффективного белкового обеспечения организма.

 

6.2 Аминокислотный состав мяса.

Как известно, одним из критериев биологической ценности белков является количественное соотношение аминокислот, входящих в их состав. Нами установлено, что белок мышечной ткани страуса содержит как незаменимые аминокислоты (треонин, валин, метионин, изолейцин, лейцин, фенилаланин, лизин), так и заменимые (аспарагиновая кислота, серин, глутаминовая кислота, пролин, глицин, аланин, цистин, тирозин, гистидин, аргинин), что делает мясо африканского страуса биологически полноценным продуктом (Таблица 9).

Как известно, некоторые аминокислоты (например глицин, глутаминовая кислота, аланин, треонин, лизин, лейцин и др.), являются важными предшественниками аромата и вкуса мяса. Они при термической обработке подвергаются различного рода превращениям, обуславливающим вкус и аромат мясных продуктов.

Исследованиями также установлено, что белковая часть мышечной ткани африканского черношеего страуса богата аланином (4,62 г/100 г белка), глицином (3,23 г/100 г белка), глутаминовой кислотой (17,54 г/100 г белка) и гистидином (3,87 г/100 г белка), от которых зависят показатели свежести мяса.

Таблица 9

 

Аминокислотный состав мяса африканского страуса

 

 

Аминокислота

Мясо

 

г/100 г белка

(М)

страуса

 

г/100 г

мяса

(М)

Мясо индей-ки, г/100 г мяса (по Петровскому К.С., 1971)

Говядина, г/100 г мяса (по Журавской и сотр., 1985)

Аспарагиновая кислота

9,23

1,91

1,77

2,32

Треонин*

4,30

0,89

0,80

0,87

Серин

3,57

0,74

0,78

0,90

Глутаминовая кислота

17,54

3,63

3,07

3,60

Пролин

3,36

0,70

0,68

0,65

Глицин

3,23

0,67

0,93

0,87

Аланин

4,62

0,96

1,08

1,36

Цистин

0,97

0,20

0,33

0,39

Валин*

4,38

0,91

1,18

1,14

Метионин*

2,15

0,44

0,66

0,58

Изолейцин*

4,67

0,97

1,26

0,93

Лейцин*

7,72

1,60

1,83

1,62

Тирозин

3,21

0,66

0,65

0,80

Фенилаланин*

4,09

0,85

0,96

0,90

Гистидин

3,87

0,80

0,64

0,76

Лизин*

10,64

2,20

2,17

1,74

Аргинин

6,79

1,41

1,51

1,29

ИТОГО:

94,35

19,53

20,3

20,64

Белок, %

 

20,7

24,0

20,9

 

* - незаменимые аминокислоты

 

6.3 Содержание холестерина в мясе.

Уровень холестерина, определённый нами в мясе африканского черношеего страуса равен, в общем, таковому в мясе крупного рогатого скота и индейки и приведён в таблице 8.

 

6.4 Жирнокислотный состав липидов мышечной ткани.

Жирнокислотный состав липидов мышечной ткани являетсяважным показателем пищевой ценности мяса. Результаты проведённых нами сравнительных исследований мяса страусов показали, что в нём содержатся следующие кислоты (Таблица 10).

Таблица 10

 

Жирнокислотный состав мяса африканского страуса, %

 

Наименование жирных кислот

Мясо страуса

(М)

Говядина

(по Paleari M.A., 1998)

Каприловая С8:0

0,28

-

Каприновая С10:0

0,66

-

Лауриновая С12:0

0,85

0,10

Миристиновая С14:0

3,70

2,10

Пентадеценовая С15:1

1,90

0,10

Пальмитиновая С16:0

24,77

25,10

Пальмитолеиновая С16:1

2,88

2,90

Маргариновая С17:0

0,88

0,90

Гептадеценовая С17:1

1,40

0,70

Стеариновая С18:0

15,27

18,50

Олеиновая С18:1

33,63

37,20

Линолевая С18:2 w6

10,45

5,50

Линоленовая С18:3 w3

0,48

0,20

Арахидоновая С20:4 w6

2,34

0,50

Эйкозапентаеновая С20:5 w3

0,22

0,20

Докозапентаеновая С22:5 w3

0,28

-

ИТОГО :

100,0

98,0

 

Следует иметь в виду, что такие полиненасыщенные жирные кислоты, как линолевая С18:2 w6 и линоленовая С18:3 w3 не синтезируются в организме. Так, линолевая кислота является предшественником образующейся в организме арахидоновой кислоты (С20:4w6). Полиненасыщенные жирные кислоты относятся к незаменимым компонентам пищи. Они обладают высокой активностью, принимают участие в регуляции многих процессов в организме и образовании клеточных мембран. Общепризнана также роль жиров как растворителей для многих компонентов аромата мясных продуктов питания. Сравнивая жирнокислотный состав липидов мяса страусов и говядины, видно, что различия связаны, в основном, с более высоким содержанием в липидах страусов линолевой кислоты (почти в 2 раза), имеющей две двойные связи и играющей важную роль в обменных процессах в организме.

 

6.5 Содержание некоторых витаминов в мясе.

Как можно видеть из таблицы 11, мясо страусов в сравнении с говядиной и мясом индейки богато витамином В1, в нём больше витамина РР чем в говядине и меньше витамина В2 по отношению к мясу индейки, что, однако, может быть связано с типом кормления, возрастом и условиями содержания птицы.

Таблица 11

 

Содержание некоторых витаминов в мясе африканского страуса

№ п/п

Наименование

Количество, мг / %

 

витаминов

 

Мясо страуса

(М)

Говядина I-й категории (по Петровскому К.С., 1971)

Мясо индейки (по Петровскому К.С., 1971)

1

В1

0,138

0,060

0,050

2

В2

0,208

0,150

0,220

3

РР

3,74

2,800

3,800

 

6.6 Содержание минеральных веществ.

Как видно из таблицы 12, мясо страусов по минеральному составу практически сопоставимо с говядиной и несколько уступает мясу индейки (кроме содержания К).

Таблица 12

 

Содержание минеральных веществ в мясе страуса

№ п/п

Минеральные

Количество, мг/кг

 

вещества

Мясо

страусов

(М)

Говядина I-й категории (по Петровскому К.С., 1971)

Мясо индейки

(по Петровскому К.С., 1971)

1

Fe

29,68

26,0

40,0

2

K

2451,6

3150,0

2100,0

3

Na

787,50

600,0

1000,0

4

Mg

259,80

210,0

190,0

5

Ca

59,00

90,0

120,0

6

P

1434,00

1980,0

2000,0

 

6.7 Микроструктурная композиция мышечной ткани страусов.

При микроструктурном исследовании мышечной ткани страуса нами установлено, что мышечные волокна прямые или волнистые. Поперечная исчерченность отчётливо выражена, ядра волокон палочковидной формы, располагаются под сарколеммой в виде цепочек (Рис 16). Аналогичное расположение ядер характерно для мышечной ткани млекопитающих или красного мяса птиц. Деструктивные изменения в структуре волокон, по-видимому, связаны с автолитическими процессами, развивающимися под действием эндогенных ферментов после убоя птицы, обнаруживаются в виде отдельных поперечных трещин. Границы между волокнами отчётливо выражены.

Рис. 16. Продольный гистологический срез мышечной ткани страуса (m. gastrocnemius)

1 - мышечное волокно

2 - соединительнотканная прослойка

3 - ядро

На поперечном срезе мышечные волокна полигональной формы, лежат свободно по отношению друг к другу. Соединительнотканные прослойки разрыхлены, лежат свободно (Рис 17). Средний диаметр мышечных волокон 59,2 мкм, толщина соединительнотканных прослоек 20-120 мкм. Данные микроструктурного анализа позволяют сравнить мясо страуса по диаметру мышечных волокон со свининой, а по толщине соединительнотканных прослоек с мясом птицы.

Рис. 17. Поперечный гистологический срез мышечной ткани страуса (m. gastrocnemius)

1 - мышечное волокно

2 - соединительнотканная прослойка

3 - ядро

 

6.8 Относительная биологическая ценность мяса страусов (ОБЦ).

Используемые в качестве тест-культуры реснитчатые инфузории Тетрахимена пириформис (штамм WH14) во многом сходны по основным этапам обменных процессов с высшими организмами. В качестве контроля при сравнительном исследовании нами использованы пробы мяса индейки и курицы. Как можно видеть из таблицы 13, мясо страусов по биологической ценности сопоставимо с мясом индейки и курицы. Разница в показателях между ними недостоверна.

Таблица 13

 

Относительная биологическая ценность мяса африканского страуса (n=6)

№ п/п

пробы

Вид мяса

Кол-во клеток инфузорий в одном мл среды

ОБЦ в % к мясу страуса

1

Мясо страуса (Россия)

277х103

100,0

2

Мясо индейки (Бразилия)

280х103

101,1 + 1,5

3

Мясо курицы (Китай)

270х103

97,5 + 2,3

 

Таким образом, характеризуя мясо африканского страуса, можно заключить, что по своему химическому составу, пищевой и биологической ценности оно не уступает, а по ряду показателей существенно превосходит мясо домашней птицы и крупного рогатого скота.

 

ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ

 

Зарождающееся в последнее десятилетие в Российской Федерации страусоводство, как показывает его развитие за рубежом, обещает стать значительным направлением в пополнении мясного сырья в стране. В связи с этим получают развитие фермы по разведению страусов как продуктивной птицы.

В результате проведённых наблюдений и анализа литературных данных нами установлено, что значительная часть поголовья страусов содержится в приспособленных бетонных коровниках и телятниках, где не поддерживается соответствующий температурно-влажностный режим, режим освещения и вентиляции, не выдерживаются минимальные нормативы площадей на 1 голову. Содержание страусов в стеснённых условиях при недостатке мышечной активности, ограничении поступления кислорода в помещения и повышенной влажности в них, недостаточная площадь выгулов и нарушение общепринятых ветеринарно-санитарных требований неминуемо приводит к снижению иммунитета и, как следствие, поражению птицы (особенно молодняка) различными заболеваниями. Как показали наши наблюдения, особенно негативно влияет на поголовье избыточная влажность воздуха и сквозняки, образующиеся, как правило, в холодное время года в железобетонных строениях приспособленных под страусофермы из коровников, телятников и прочих помещений. Данные строения нуждаются в существенной доработке до состояния, при котором содержание в них поголовья страусов различного возраста не будет отрицательно сказываться на их физической кондиции.

Отдельного пристального внимания заслуживают помещения, используемые для убоя и переработки страусов. Поскольку массового убоя страусов в нашей стране пока не ведётся, под убойные помещения приспосабливают не предназначенные и ранее не использовавшиеся для этих целей здания и сооружения, зачастую находящиеся в неудовлетворительном санитарно-техническом состоянии. При адаптации таких помещений к нуждам убойных цехов или площадок важно тщательно соблюдать все имеющиеся требования нормативных документов на эту тему, поскольку по санитарным требованиям к помещениям цеха для убоя страусов не имеют каких-либо отличий от таковых для убоя скота.

Нами разработаны ветеринарно-санитарные требования к убойным пунктам, которых необходимо придерживаться как при постройке новых, так и при реконструкции ранее использовавшихся помещений с целью приспособления их для проведения убоя страусов. Используя же существующие площади мясоперерабатывающих предприятий необходимо лишь дооборудовать их помещения в соответствии с технологией.

Необходимо также отметить важность соблюдения технологии убоя и разделки страусов. Приведённая нами схема убоя является основной, придерживаться которой, с незначительными отступлениями следует везде, где происходит убой страусов и переработка туш. Одним из важнейших этапов является сам способ убоя птицы. При отсутствии специального импортного оборудования для электрического или механического оглушения страусов возможно применять декапитацию (гильотинирование). При использовании любого способа убоя важно обеспечить безопасность персонала, как от поражения электрическим током, так и от нанесения травм птицей, находящейся в состоянии судорог. Важно не забывать также о спокойном обращении с птицей, с целью недопущения возникновения у неё стрессовых реакций, так как резкое и жестокое обращение не только антигуманно, но и отрицательно влияет на качество конечного продукта.

Отдельное внимание следует уделить вопросам подготовки и обучения персонала. Неопытность сотрудников является одним из факторов, влияющим на качество получаемого мяса и кожи. Важно контролировать такие этапы технологии убоя и разделки, как: качество обескровливания, щипки пера, правильность снятия кожи и её целостность и особенно своевременность удаления желудочно-кишечного тракта, так как у неопытных работников эти этапы занимают существенное количество времени.

При организации убоя и переработки страусов своими силами, владельцам страусоферм необходимо согласовывать свои действия с районными ветеринарными и санитарными службами, а сотрудников направлять на обучение и стажировку на уже функционирующие убойные пункты.

Нами дана схема проведения послеубойной ветеринарно-санитарной экспертизы туш и органов страусов, которая имеет свои особенности, связанные со спецификой анатомии и физиологии страусов. Наблюдаемые нами незаразные болезни этой птицы (птерофагия, скручивание пальцев) в целом влияют лишь на зоотехнические показатели, не затрагивая вопросы ветеринарно-санитарной экспертизы. Что касается инфекционных заболеваний, то литературные данные свидетельствуют о хорошей устойчивости взрослых страусов к действию инфекционных агентов. В основном от болезней страдают птенцы в возрасте до 3-6 месяцев, при этом смертность достигает больших размеров. Также на заболеваемости могут сказываться неблагоприятные зоогигиенические условия.

Данные специальной литературы указывают, что страусы болеют всеми основными видами заболеваний, поражающих домашнюю птицу; имеется сообщение о заболеваемости также сибирской язвой. При этом возбудители большинства инфекционных заболеваний не являются видоспецифичными. Напротив, паразитарные заболевания страусов в большинстве случаев вызываются специфическими агентами. Поскольку этиология, патогенез и патологоанатомическая картина болезней страусов в условия РФ не установлена в связи с отсутствием достаточного количества случаев заболевания, при проведении ветеринарно-санитарной экспертизы необходимо использовать данные, имеющиеся для сельскохозяйственной птицы, а также представленные нами данные о нормальной морфологии органов. Кроме того, нами собраны и обобщены в виде таблицы основные клинические признаки, характерные для здоровых страусов и страусов, подозрительных по заболеванию.

Впервые проведены комплексные исследования по разработке и определению ряда качественных показателей мяса страусов, а именно органолептических, физико-химических, санитарно-микробиологических, а также изучен химический состав, содержание аминокислот, холестерина, жирнокислотный состав липидов мышечной ткани, витаминов, минеральных веществ, относительной биологической ценности, проведены микроструктурные исследования мышечной ткани.

Питательная ценность страусиного мяса является главным фактором роста его потребления в Европе и США. Полученные нами данные общего химического состава произведённого в России мяса страусов подтверждают зарубежные данные по всем показателям. Так, в частности, одними из наиболее привлекательных признаков страусятины являются сравнительно низкое содержание в мясе жира, его низкая калорийность, поскольку содержание жира в мясе страусов почти в два раза ниже в сравнении с говядиной и в шесть раз в сравнении с мясом индейки, чем можно объяснить низкую энергетическую ценность мяса страусов в сравнении с говядиной и индюшатиной (в 1,2-2 раза), что делает его более диетическим.

По соотношению количества белка к энергетической ценности мясо страусов является высокоценным пищевым продуктом, незначительно уступая белку куриного яйца (соответственно 22,6 г/100 ккал и 23,0 г/100 ккал) т.е. может использоваться при необходимости наиболее эффективного белкового обеспечения организма.

При этом нашими исследованиями подтверждена биологическая полноценность мяса страуса, произведённого в российских условиях по составу аминокислот, содержанию витаминов и минеральных веществ. Так, белок мышечной ткани страусов содержит как заменимые, так и незаменимые аминокислоты, в частности оно (мясо) богато аланином, глицином, глутаминовой кислотой и гистидином в сравнении с говядиной и индюшатиной. Мясо страусов в сравнении с говядиной и индюшатиной богато витаминами В1 и РР.

Кроме того, биологическая полноценность была подтверждена нами в опытах с использованием одноклеточной тест-культуры, где мясо страуса получило оценку наравне с мясом курицы и индейки. Отдельное внимание следует обратить на полученные нами данные по содержанию в страусином мясе отдельных жирных кислот. Так, липиды мышечной ткани страусов в сравнении с говядиной характеризуются более высоким содержанием лауриновой, миристиновой, гептадиеновой, линолевой, линоленовой кислот, а имеющееся их количественное и качественное соотношение исключительно благоприятно влияет на липидный обмен в человеческом организме.

Нежность мяса определяется в том числе и его морфологией. Так, микроструктурными исследованиями мышечной ткани страуса установлено сходство её строения с мышечной тканью свиней и домашней птицы, что подтверждает её пищевую привлекательность. Кроме того, мясо страуса можно использовать при приготовлении тех же кулинарных блюд, что и, например, при использовании говядины. Отдельные мышцы страуса различных категорий могут быть использованы для приготовления отбивных, стейков, гуляша, мясных полуфабрикатов и колбасных изделий [77].

Проведённые исследования позволили внести страусов, выращиваемых на мясо, в перечень списка убойной птицы и разработать методические рекомендации по ВСЭ мяса страусов, что позволит качественно проводить ветеринарно-санитарную оценку и обеспечивать выпуск мяса страусов высокого качества.

 

ВЫВОДЫ

 

  1. 1. На основании проведённых исследований подготовлена схема предубойного ветеринарного осмотра страусов с учётом их анатомо-морфологических особенностей, для чего предложены показатели основных клинических признаков здоровой и подозрительной по заболеванию птицы.
  2. 2. Предложен порядок проведения послеубойной ветеринарно-санитарной экспертизы туш и органов, заключающийся в последовательности осмотра и ветсанэкспертизы по ходу технологического процесса первичной переработки, начиная с контроля правильности убоя, степени обескровливания, осмотра головы, шеи, кожного покрова и суставов, затем туши, а также внутренних органов, которые (органы) описаны нами в состоянии нормы (величина, форма, цвет, консистенция).
  3. 3. По результатам санитарно-микробиологического исследования мясо страуса после убоя и в процессе длительного хранения соответствует требованиям существующих нормативов содержания микрофлоры в мясе птицы.
  4. 4. Проведёнными исследованиями определены параметры свежего, сомнительной свежести и несвежего мяса страусов по органолептическим (внешнее состояние туши, мышцы на разрезе, консистенция, цвет и запах мяса, жира, состояние серозной оболочки грудобрюшной полости, проба варкой) и физико-химическим показателям (микроскопия мазков-отпечатков, рН, определение продуктов первичного распада белков, определение количества летучих жирных кислот. Применяемые для исследования мяса домашней птицы реакции на пероксидазу и амино-аммиачный азот неприемлемы для мяса страусов из-за их нечитаемости, в силу окрашивания мясной вытяжки в насыщенный красный цвет (окрашивание миоглобином).
  1. 5. Установлено, что мясо африканского страуса, произведённое на территории РФ по своему качественному составу (содержанию белка, жира, холестерина, аминокислотному и жирнокислотному составу, содержанию витаминов и минеральных веществ, биологической ценности) не уступает, а по ряду показателей превосходит мясо домашней птицы и крупного рогатого скота.
  2. 6. Проведёнными гистологическими исследованиями установлено, что мышечная ткань страусов по диаметру мышечных волокон сравнима со свининой, а по толщине соединительнотканных прослоек с мясом птицы.
  3. 7. Подготовлены ветеринарные требования к строительству убойных пунктов и площадок для убоя страусов и их первичной переработки. Предложен специальный станок для фиксации страусов и их убоя, представляющий собой раскол с высокими перилами и плахой на которой производится отсечение головы.
  4. 8. Изучение состояния развития страусоводства в Российской Федерации и данные проведённых исследований по оценке качественных показателей мяса страусов показывают, что для дальнейшего развития страусоводства в Российской Федерации и получения высококачественной продукции необходимо проектирование и строительство страусоводческих ферм с завершённым технологическим циклом содержания и воспроизводства страусов, их первичной переработки и хранения готовой продукции.

 

ПРЕДЛОЖЕНИЯ ДЛЯ ПРАКТИКИ

 

  1. 1. Страусы, выращиваемые на мясо, внесены в перечень списка убойной птицы по п. 10.1 проекта “Правил ветеринарного осмотра убойных животных и ветеринарно-санитарной экспертизы мяса и мясных продуктов” (представлено в ДВ МСХ РФ 17.08.2001г.).

 

  1. 2. Методические рекомендации по проведению ветеринарно-санитарной экспертизы мяса страусов (Утв. Отделением ветеринарной медицины РАСХН 18 октября 2004г. и включены в сборник РАСХН “Новые методы исследований по проблемам ветеринарной медицины”, ч.1. Методы исследований в ветеринарной санитарии и экологии. М., 2004, с. 298-323.)

 

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

 

  1. 1. Багмут А., Морозов Н., Микиртычев Г. Разведение страусов в России. // Зоотехния, 2002, №3, с. 8-10.
  2. 2. Балжиков И. Страусы наступают. // Приусадебное хозяйство, 1998, №1, с. 70.
  3. 3. Бевольская М. Акселерация развития страусов при их доместикации в условиях полувольного содержания. // Проблемы доместикации животных. Институт эволюционной морфологии и экологии животных им. А.Н. Северцева АН СССР. Москва, 1989, с. 188-191.
  4. 4. Бевольская М. Разведение эму в неволе и в полувольных условиях. // Разведение ценных и редких видов животных. Сборник научных трудов. Москва, 1987, с. 130-139.
  5. 5. Беленький Н.Г., Долгов В.А., Нелюбин В.П., Шаблий В.Я., Суханов Б.П. Методические рекомендации для использования экспресс-метода биологической оценки продуктов и кормов. Издательство ВАСХНИЛ, Москва, 1990, 10 стр.
  6. 6. Водянников В., Галкин С., Арьков А., Ерёмичев Г. Будем разводить страусов. // Птицеводство, 2000, №3, с. 31-32.
  7. 7. Гагарин В.В. Перспективы продовольственного использования страусов в России. // Проблемы ветеринарной санитарии и гигиены. Сб. научн. трудов ВНИИВСГЭ, 2002. Т. 114. С. 96-102.
  8. 8. Гагарин В.В. Предубойный осмотр и послеубойная ветеринарно-санитарная экспертиза туш и органов страусов. // Ветеринарный консультант, 2004, № 19-20, с. 26-30.
  9. 9. Гагарин В.В. Органолептические и физико-химические показатели свежести мяса страусов. // Ветеринарный консультант, 2004, № 23-24, с. 20-22.

10. Гагарин В.В. Качественные показатели и биологическая полноценность мяса страусов. // Ветеринарный консультант, 2004, № 21, с. 22-24.

11. Гагарин В.В. Ветеринарно-санитарная экспертиза туш и органов страусов. ГНУ Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной санитарии, гигиены и экологии Россельхозакадемии - Москва 2004. - 17 с. - Библиогр. 16 назв. - Рус. - Деп. в ВИНИТИ. 28.12.2004, № 2069-В 2004.

12. Гагарин В.В. Биологическая ценность и химический состав мяса страусов. ГНУ Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной санитарии, гигиены и экологии Россельхозакадемии - Москва 2004. - 17 с. - Библиогр. 16 назв. - Рус. - Деп. в ВИНИТИ. 28.12.2004, № 2070-В 2004.

13. Житенко П.В., Боровков М.Ф. Ветеринарно-санитарная экспертиза продуктов животноводства. Москва, изд. “Колос”, 1998, 335 стр.

14. Журавская Н.К., Алёхина Л.Т., Отряшенкова Л.М. Исследование и контроль качества мяса и мясопродуктов. М., 1985, 296 стр.

15. Куликов Л. Болезни африканского страуса. // Птицеводство, 2003, №5, с.25-27.

16. Куликов Л. Современное состояние страусоводства в России и странах СНГ. // Новости страусоводства, 2002, №2, с. 3-4.

17. Куликов Л., Спиридонов, А. Страусоводство Италии. // Птицеводство, 2001, №3, с. 52-53.

18. Куликов Л. Страусы на снегу. // Птицеводство, 1997, №1, с. 39-40.

19. Куликов Л., Туревич В. Зоологическая систематика и телосложение страусов. // Птицеводство, 2000, №6, с. 25-26.

20. Куликов Л., Туревич В. Состояние и перспективы развития страусоводства в России и странах СНГ. // Новости страусоводства. Март 2001 г. с. 2.

21. Петровский К.С. Гигиена питания. Том 1. Изд. “Медицина”, Москва, 1971. 512 стр.

22. Покровский А.А. Биохимические исследования в клинике. Изд. “Медицина”, Москва, 1969 г. - 300 с.

23. Рахманов А. Разведение страусов. - М.: ООО “Аквариум ЛТД”, 2001.-64 с.

24. Рахманов А. Ценная фермерская птица. // Птицеводство, 2001, №1, с. 60-62.

25. Рокитский П.Ф., Основы вариационной статистики для биологов. Минск, изд-во Белгосуниверситета, 1961.

26. Скурихин И.М., Тутельян В.А. Руководство по методам анализа качества и безопасности пищевых продуктов. М.: Брандес, Медицина, 1998. - 342 с.

27. Синицын С. Экономические аспекты страусоводства. // Новости страусоводства, 2002, №2, с. 6.

28. Сирухи М. А вы хотите разводить страусов? // Комбикорма, 2000, №7, с. 15-16.

29. Туревич В.И. Страусоводство : история, теория и практика - М.: изд. “Колос”, 2000. - 129 с.

30. Улитин А. Нужны ли России страусы. // Охота и охотничье хозяйство, 2001, №1, с. 14-15.

31. Хорбанчук Я. Разведение страусов. (перевод с польского) 2002, p. 187

32. Allwright D. Viruses encountered in intensively reared ostriches in South Africa. // Proceedings of the Conference "Improving Our Understanding of Ratities in a Farming Environment". Manchester, 1996, March 27-29.

33. Allwright D., Wessels J. Cryptosporidium species in ostriches. // Veterinary Record, 1993 : 133 (1), p. 24.

34. Andrews L., Gillespie J., Schupp A. and Taylor G. Ratite meat sensory scores compared with beef. // Journal of Food Quality, 23 (2000), p. 351-359.

35. Aye P.P., Morishita T.Y., Grimes S., Skowronek A., Mohan R. Encephalomalacia associated with vitamin E deficiency in commercially raised emus. // Avian Diseases 42: p. 600-605, 1998.

36. Barton N.J., Seward D.A. Detection of Libyostrongylus douglassi in ostriches in Australia. // Australian Veterinary Journal, Vol. 70. No. 1, January 1993, p. 31-32.

37. Batton C., Barton N.J., Veale P.I., Overend D.J. A survey of Libyostrongylus douglassi on ostrich farms in eastern Victoria. // Australian Veterinary Journal, Vol. 70; No. 2. February 1992. p. 76.

38. Beckerbauer L.M., Thiel-Cooper R., Ahn D.U., Sell J.L., Parrish F.C. and Beitz D.C. Influence of two dietary fats on the composition of emu oil and meat. // Poultry Science 80: 2001, p. 187-194.

39. Bertram B.C.R. The ostrich communal nesting system. // Princeton University Press, Princeton, New Jersey, 1992.

40. Bezuidenhout A., Burger W.P. The incidence of tibiotarsal rotation in the ostrich (Struthio camelus). // Journal of the South African Veterinary Association, (1993), 64(4): p. 159-161.

41. Bezuidenhout A., Penrith M-L., Burger W.P. Prolapse of the phallus and cloaca in the ostrich (Struthio camelus). // Journal of the South African Veterinary Association, (1993), 64(4): p. 156-158.

42. Binford K., Boyd K. Emu oil-story of discovery continues. // The Ostrich News, 1997, 11(111), p. 21-24

43. Blignaut A., Burger W.P., Morley A.J., Bellstedt D.U. Antibody responses to La Sota strain vaccines of Newcastle Disease virus in ostriches (Struthio camelus) as detected by enzyme-linked immunosorbent assay. // Avian Diseases 44: p. 390-398, 2000.

44. Capua I., Casaccia C., Ianniello M., Pompilii C., Oliveri S. Serologic investigation for avian pathogens in imported ostriches (Struthio camelus). // La Selezione Veterinaria, 1998, № 8-9; p. 655-659.

45. Capua I. Crimean-Congo haemorragic fever in ostriches: a public health risk for countries of the European Union? // Avian Pathology, (1998) 27, p. 117-120.

46. Cilliers S.C., Du Preez J.J., Maritz J.S. and Hayes J.P. Growth curves of ostriches (Struthio camelus) from Oudtshoorn in South Africa. // Animal Science, 1995, 61 : p. 161-164.

47. Cilliers S.C., Hayes J.P., Maritz J.S., Chwalibog A., Du Preez J.J. True and apparentmetabolizable energy values of lucern and yellow maize in adult roosters and mature ostriches (Struthio camelus). // Animal Production, 1994, 59, p. 309-313.

48. Cloudsley-Thompson J.L., El Rasid M.M. Water economy of the Ostrich. // Nature, Vol. 216, December 9, 1967, р. 1040.

49. Colombo F., Viacava R., Giaretti M. Differentiation of the species ostrich (Struthio camelus) and emu (Dromaius novaehollandiae) by polymerase chain reaction using an ostrich-specific primer pair. // Meat Science, 56 (2000) p. 15-17.

50. Cooper R. Ostrich meat, an important product of the ostrich industry: a Southern African perspective. // World's Poultry Science Journal, 1999, 55 (4), p. 389-402.

51. Crawford E.C. Jr., Schmidt-Nielsen K. Temperature regulation and evaporative cooling in the ostrich. // American Journal of Physiology, 1967 feb. V. 12, №2, р. 347-354.

52. Dhillon A.S. Histomoniasis in a Captive Great Rhea (Rhea americana). // Journal of Wildlife Diseases, 19(3), 1983, p. 274

53. Dicks M.R., Snell P.R. The Oklahoma ratite indastry. // Research Report P-950, Р. 24.

54. Dorrestein G.M. Medical problems in ostrich keeping in the Netherlands. // Ostrich Update, 1993, p. 14-16.

55. Fantova M., Ciappesoni C.G., Kruzikova L. Initial study on growth curve and meat analysis in rhea americana. // Agricultura Tropica et Subtropica, Universitas Agriculturae Praha, Vol. 34, 2001, р. 79-86.

56. Fockema A., Malan F.S., Cooper G.G., and Evelyn Visser. The anthelmintic efficacy of Fenbendazole against Libyostrongylus Douglassi and Houttuynia Struthionis in ostriches. // Journal of the South African Veterinary Association, (1985) March, 56 (1) : p. 47-48.

57. Frapple P., Hagan R. Taking the emu to market. // Western Australia Journal of Agriculture, Vol. 33, 1992, р. 91-94.

58. Gillespie J., Taylor G., Schupp A., Wirth F. Opinions of professional buyers toward a new, alternative red meat: ostrich. // Agribusiness, Vol. 14, No. 3, p. 247-256 (1998).

59. Gonzalez-Trejos V. Learning More About Ostriches. // Misset World Poultry, Volume 10, № 8, p. 15-17. 1994.

60. Gray M.L., Puette M., Latimer K.S. Microsporidiosis in a young ostriches (Struthio camelus). // Avian Diseases 42: p. 832-836, 1998.

61. Gregory D; Edwards W. and Stair E. A case of Monensin poisoning in ostriches. // Veterinary and Human Toxicology 1992; 34 (3), p. 247.

62. Gruss B., Malan F.S., Nansy A. Roper, Carol A. du Plessis and Alison J. Ashburner. The anthelmintic efficacy of Resorantel against Houttuynia Struthionis in ostriches. // Journal of the South African Veterinary Association, (1988), 59 (4) : p. 207-208.

63. Gutsche K. Ostrich Farm Management. // Landwirfschaftsverlag GmbH, Munster-Hiltrup Auflage, 1995, p. 144-172.

64. Holtzhausen A., Koetze M. The Ostrich C.P., Nel Museum, Oudtshoorn, South Africa, 1995.

65. Hoover J, Lochner F, Mullins S. Quill mites in an ostrich with rhinitis, sinusitis and air sacculitis. // Companion Animal Practice, 1988 : 2(3), p. 23-26.

66. Horbanczuk J. Consumption of ostrich eggs. // The Ostrich News, 1998, 11 (117), p. 9-10.

67. Horbanczuk J., Sales J., Celeda T., Konecka A. Cholesterol content and fatty acid composition of ostrich meat as influenced by subspecies // Meat Science, 1998, N. 3, p. 385-388.

68. Horbanczuk J.O., Sales J., Piotrowski J., Zieba G., Celeda T., Reklewski T., Kazaczynski K. Lipid, cholesterol content and fatty acid composition of ostrich eggs as influenced by subspecies. // Archiv Fur Geflugelkunde, 1999, № 63 (5), р. 234-236.

69. Horbanczuk J., Sales J. Total lipid and cholesterol content and fatty acid composition of meat obtained from ostriches reared on a commercial farm. // Animal Science Papers and Reports, vol. 16, (1998) no. 1.

70. Horbanczuk J. Utilization of ostriches. // Biuletyn Inform (inst. zootechn), 1996, № 4 (211), p. 87-92.

71. Huchzermeyer F.W. Newcastle disease virus isolated from ostriches in South Africa. // Journal of the South African Veterinary Association, (1993), 64 (4), p. 140.

72. Huchzermeyer F.W. Ostrich diseases. // Agricultural Research Council Onderstepoort Veterinary Institute, 1994, Republic of South Africa.

73. Hutton J. Introduction to the ostrich industry in Zimbabwe. // Ostrich Workshop for Veterinarians. University of Zimbabwe, Veterinary Faculty Harare 1992, April 11-12, p. 2-11.

74. Jensen J.M., Jonson J.H., Weiner S.T. Husbandry and medical management of oslriches, emus and rheas. // Texas University, 1992.

75. Jorgensen P.H., Herczeg J., Lomniczi B., Manvell R.J., Holm E., Alexander D.J. Isolation and characterization of avian paramixovirus type 1 (Newcastle disease) viruses from a flock of ostriches (Struthio camelus) and emus (Dromaius novaehollandiae) in Europe with inconsistent serology. // Avian Pathology, (1998), № 27, p. 352-358.

76. Jorgensen P.H., Nielsen O.L., Hansen H.C., Manvell R.J., Banks J., Alexander D.J. Isolation of avian influenza A virus, subtype H5N2, and avian paramixovirus type 1 from a flock of ostriches in Europe. // Avian Pathology, (1998), № 27, p. 15-20.

77. Kistner C., Reiner G. Strausse. Stuttgart: Ulmer, 2002.

78. Kreibich A., Sommer M. Ostrich farm management. Land-wirtschaftsverlag GmbH, Munster-Hiltrup, 1995.

79. Lambooij E., Potgieter C.M., Britz C.M., Nortje G.L., Pieterse C. Effects of electrical mechanical stunning methods on meat quality in ostriches. // Meat Science, 52, (1999), p. 331-337.

80. Ley E.C., Morishita T.Y., Harr B.S., Mohan R., Brisker T. Serological survey of slaughter-age ostriches (Struthio camelus) for antibodyes to select avian pathogens. // Avian Diseases, 44, p. 989-992, 2000.

81. Madeiros C.A. Types of ostrich and their potential use in ostrich farming. Ostrich Update, 1, p. 45-46, 1993.

82. McMillan E.G., Zellen G. Histomoniasis in a rhea. // Canadian Veterinary Journal, Volume 32, April 1991, p. 244.

83. Mellett F.D. A note on the musculature of the proximate part of the pelvic limb in the ostrich (Struthio camelus). // Journal of South African Veterinary Association, (1994), 65(1), p. 5-9.

84. Mellett F.D., Randall J. H. A note on the grouth of body parts of the, ostrich (Struthio camelus) // Animimal Production, 1994, V. 2, p. 291-293.

85. Morris C.A., Harris S.D., May S.G., Jackson T.C., Hale D.S., Miller R.K., Keeton J.T., Acuff G.R., Lucia L.M., Savell J.W. Ostrich slaughter and fabrication : 1. Slaughter yields of carcasses and effects of electrical stimulation on post-mortem pH. // Poultry Science., 74, 1995, № 10, p. 1683-1687.

86. Morris C.A., Harris S.D., May S.G., Jackson T.C., Hale D.S., Miller R.K., Keeton J.T., Acuff G.R., Lucia L.M., Savell J.W. Ostrich Slaughter and Fabrication : 2. Carcass weights, fabrication yields and muscle color evaluation. // Poultry Science., 74, 1995, № 10, p. 1688-1692.

87. Mushi E.Z., Isa J.F.W., Chabo R.G., Binta M.G., Modisa L., Kamau, J.M. Impaction of the stomach in farmed ostriches (Struthio camelus) in Botswana. // Avian Diseases, 42, p. 597-599, 1998.

88. Mushi E.Z., Isa J.F.W., Chabo R.G., Binta M.G., Nyange J., Modisa L. Selenium - vitamin E responsive myopathy in farmed ostriches (Struthio camelus) in Botswana. // Avian Pathology, (1998) 27, p. 326-328.

89. O'Malley P. Farming emus. Farmnote No. 68/93. Western Australian Department of Agriculture, Р. 5.

90. Omar H.M., Mahmoud N.E. and Fahmy M.M. Cryptosporidiosis in african ostrich (Struthio camelus). // Assiut Veterinary Medicine Journal, Vol. 40, No. 79, October 1998, р. 250-252.

91. Osterhoff D.R. Ostrich farming in South Africa. // World Review of Animal Production 1979, 15, p. 19-30.

92. Otremba M.M., Dikeman M.E., Boyle E.A.E. Refrigerated shelf life of vacuum-packaged, previously frozen ostrich meat. // Meat Science, 52, 1999, p. 279-283.

93. Pakandl M., Korenkova G. Occurrence of intestinal parasites in a breeding of ostrich (Struthio camelus). // Vet. Med. Czech, 44, 1999 (7), p. 221-223.

94. Paleari M.A., Camisasca S. Ostrich meat : Physico-chemical Characteristics and Comparison with Turkey and Bovine Meat. // Meat Science., 1998, ? 3/4, p. 205-210.

95. Penrith M-L., Burger W.P. Cryptosporydium spp. in an ostrich. // Journal of the South African Veterinary Association, (1993), 64(2), p. 60-61.

96. Perelman B., Grieff M., Kuttin E.S., Rogol M. Campylobacteriosis in ostriches. // Israeli Journal of Veterinary Medicine, 47, 1992, p. 116-119.

97. Perelman B., Gur-Layie A., Samberg Y. Pox in ostriches. // Avian Pathology, 1998, 17, p. 735-739.

98. Perelman B., Kuttin E.S. Aspergillosis in ostriches. // Avian Pathology, 1992, 21, p. 159-163.

99. Perelman B., Kuttin E.S. Parsley-induced photosensitivity in ostriches and ducks. // Avian Pathology, 17, p. 183-192, 1988.

100. Perelman B. Ostrich diseases of breeders. // Ostrich Update, 1996, 3 (2), p. 49-51.

101. Pfitzer S., Verwoerd D.J., Gerdes G.H., Labuschagne A.E., Erasmus A., Manvell R.J. Grund C.H. Newcastle disease and avian influenza A virus in wild waterfowl in South Africa. // Avian Diseases, 44, p. 655-660, 2000.

102. Reiner G., Dorau H.P. and Dzapo V. Cholesterol content, nutrients and fatty acid profiles of ostrich (Struthio camelus) eggs. // Archiv Fur Geflugelkunde, 1995, ? 59 (1), р. 65-68.

103. Sales J. Fatty acid composition and holesterol content of different ostrich muscles. // Meat Science,1998, ? 4, p. 489-492.

104. Sales J. Histological, biophisical, phisical, and chemical characteristics of different ostrich muscles. // Journal Science Food Agriculture, 1996, 70, p. 109-114.

105. Sales J., Horbanczuk J., Dingle J., Coleman R., Sensik S. Carcase characteristics of emu (Dromaius novaehollandiae). // British Poultry Science, (1999), 40, p. 145-147.

106. Sales J., Horbanczuk J. Ratite meat. // World's Poultry Science Journal, Vol. 54, March 1998, p. 59-67.

107. Sales J., Marais D., Kruger M. Fat content, caloric value, cholesterol content, and fatty acid composition of raw and cooked ostrich meat. // Journal of Food Composition and Analysis, 1996, 9, p. 85-89.

108. Sales J., Navarro J.L., Bellis L., Manero A., Lizurume M.E. Martella M.B. Carcase and component yields of rheas. // British Poultry Science, (1997), 38, p. 378-380.

109. Sales J., Navarro J.L., Martella M.B., Lizurume M.E., Manero A., Bellis L., Garcia P.T. Cholesterol content and fatty acid composition of rhea meat. // Meat Science, 53, (1999), p. 73-75.

110. Sales J., Oliver-Lyons B. Ostrich meat: a review. // Food Australia, 1996, 48 (11), p. 504-511.

111. Sales J. Ostrich feathers. // Selecciones Avicolas XXXIX 1997 (6), p. 359-362.

112. Samberg Y., Hadash D.U., Perelman B., Meroz M. Newcastle Disease in ostriches (Struthio camelus): field case and experimental infection. // Avian Pathology, 18, p. 221-226, 1989.

113. Samson J. Prevalent diseases of ostrich chiks farmed in Canada // Canadian Veterinary Journal, 1997, V. 38, ? 7, p. 425-428.

114. Samson J. Behavioral problems of farmed ostriches in Canada. // Canadian Veterinary Journal, 1996, 37, p. 412-414.

115. Scheideler S.E., Angel R. Ratite nutrition: big bird feeding. // Feed International, 1996, 3, p. 24-28.

116. Schupp A.R., Gillespie J.M. Reed D. Ratite meat consumption in Louisiana. // The Louisiana Rural Economist 1997, 59(4), р. 2-4.

117. Shanawany M.M., Dingle J. Ostrich production systems. FAO Animal Production and Health Paper. Rome, 1999, P. 256.

118. Skadhhauge E., Warui C.N., Kamau J.M.Z., Maloiy G.M.O. Functions of the lower intestine and osmoregulation in the ostrich: preliminary anatomical and phisiological observations. // Quarterly Journal of Experimental Phisiology, 69, 1984.

119. Sotiraki S.T., Georgiades G., Antoniadou-Sotiriadou K., Himonas C.A. Gastrointestinal parasites in ostriches (Struthio camelus). // Veterinary Record, (2001), 148, p. 84-86.

120. Sperr B.L., Castro L. An introduction to ratite birds for the avian technican. // Proceedings of the Conference of the Association of Avian Veterinarians, 1991, p. 321-327.

121. Swart D., Mackie R.L., Hayes J.P. Fermentative digestion in the ostrich - a large avian species thatutilizes cellulose. // South African Journal of Animal Science, 1993, 23, p. 127-135.

122. Taylor G., Andrews L., Gillespie J. and Schupp A. A sensory panel evaluation of ratite meat. // Louisiana Agriculture, Vol. 40, No. 1, Winter 1997, р. 18-19.

123. Taylor G., Gillespie J.M., Schupp A. Costs and returns estimates for ostrich production. // Journal of the American Society of Farm Managers and Rural Appraisers 1997, (61), p. 34-42.

124. Ueki H., Ikeda M., Oyamada T., Yoshikawa H., Yoshikawa T. Cryptosporidium sp. isolated from an ostrich in Japan. // Journal of Japanese Veterinary Medicine Association, 54, (2001), р. 9-12.

125. Ullrey D.E., Allen M.E. Nutrition and feeding of ostriches. // Feed Science Technology, 1996, 59, p. 27-36.

126. Van der Sluis W. Ostrich Flourish in Israeli Desert. // Misset World Poultry, Volume 10, N 8, p. 10-13, 1994.

127. Vandervoodt-Jarvis C. The Dasana Ostrich Guide. Imprimerie Barras, Bruxelles, 1994.

128. Woolcock P.R., Shivaprasad H.L. and De Rosa M. Isolation of avian influenza virus (H10N7) from an emu (Dromaius novaehollandiae) with conjunctivitis and respiratory disease. // Avian Diseases, 44, p. 737-744, 2000.

129. Zhou E.-M., Chan M., McIsaac M. and Heckert R.A. Evaluation of antibody responses of emus (Dromaius novaehollandiae) to avian influenza virus infection. // Avian Diseases, 42, p. 757-761, 1998.